Срезы растений под микроскопом. Особенности препаратов для исследования под микроскопом

Детский сад № 4 "Золотая рыбка"

город Карпинск Свердловской области

 

Фрукты и овощи под микроскопом - микрофотографии. Срезы растений под микроскопом


Особенности препаратов для исследования под микроскопом

Эпидермис листа

Эпидермис листа - это покровная ткань листа, иначе ее называют кожицей. Она образована одним слоем плоских клеток, которые плотно прилегают друг к другу. Эти клетки под микроскопом кажутся светлыми, прозрачными из-за того, что значительный объем в них занимает центральная вакуоль, заполненная клеточным соком. Вакуоль оттесняет к периферии клетки ядро и все клеточные органоиды. Тем не менее, ядро хорошо видно в каждой клетке, в нем хранится вся наследственная информация. Хлоропласты в основных клетках эпидермиса листа обычно отсутствуют. Среди основных клеток кожицы выделяются клетки другой формы, они лежат попарно, образуя устьица. Каждое устьице состоит из двух замыкающих клеток бобовидной формы, и между этими клетками имеется щель в виде линзы. Эта щель называется устьичной щелью и представляет собой межклеточное пространство. Форма устьичной щели и ее размер могут изменяться в зависимости от того, насколько плотно прилегают друг к другу замыкающие устьичные клетки. В замыкающих устьичных клетках можно увидеть ядро, и в них всегда присутствуют хлоропласты, осуществляющие процесс фотосинтеза. С внешней поверхности каждая клетка кожицы листа покрыта особым защитным слоем - кутикулой. Кутикула может быть толстой и жесткой. В ее состав могут входить жироподобные вещества и воск. Кутикула должна быть прозрачной, чтобы не препятствовать проникновению солнечного света к внутренним тканям листа, где активно проходит процесс фотосинтеза. Эпидермис выполняет очень важную роль в жизнедеятельности листьев. Он защищает лист от повреждений и высыхания. Через открытые устьичные щели внутрь листа поступает воздух, он необходим для дыхания и фотосинтеза. Также через открытые устьичные щели выделяются кислород, который образуется в процессе фотосинтеза, и пары воды. Если растение испытывает недостаток воды, например, в жаркую сухую погоду, то устьичные щели закрываются. Так растение защищает себя от излишней потери воды. Ночью устьица так же обычно бывают закрыты.

Зародыш семени

Зародыш - это самая главная часть семени. Фактически - это микроскопическое растение, у которого есть все органы: зародышевый побег с зародышевым стеблем, зародышевыми листьями и зародышевой верхушечной почкой, а так же зародышевый корень. На препарате зародышевый побег направлен в одну сторону, зародышевый корень ориентирован строго противоположно. На участке между зародышевой почкой, прикрытой зародышевыми листьями, и корнем находится зародышевый стебель. Непосредственно к зародышу с одной стороны примыкает семядоля. Ее клетки по интенсивности окрашивания такие же, как клетки стебля. Семядоля - это особый лист зародыша. Семядоли защищают зародышевую почку, первыми появляясь на поверхности почвы. На препарате видно одну семядолю, следовательно, данный зародыш относится к однодольным растениям. Зародыш семени лучше рассматривать под малым увеличением микроскопа, чтобы он смог поместиться в поле зрения микроскопа целиком.

Кожица лука

Луковица - это видоизмененный побег с коротким плоским стеблем (донцем) и мясистыми сочными листьями чешуями. Поэтому кожица лука представляет собой эпидермис листа, который развивается в темноте без доступа света, в результате чего в клетках кожицы лука отсутствуют хлоропласты. Вместо хлоропластов в этих клетках имеются бесцветные пластиды - лейкопласты. Клетки кожицы лука имеют удлиненную форму, близкую прямоугольной. Границы клеток хорошо видны, они представлены прозрачными оболочками, достаточно твердыми, чтобы поддерживать форму клеток. По клеточным оболочкам возможна передача воды от клетки к клетке, а так же растворенных в воде веществ. Клетки выглядят светлыми прозрачными, благодаря тому, что значительный их объем занимает большая центральная вакуоль с клеточным соком. Вакуоль - это место запаса воды в клетке. В ней в растворенном виде могут находиться запасные питательные вещества, пигменты, растворы органических кислот, минеральных солей и разнообразные продукты жизнедеятельности растительной клетки. Вакуоль оттесняет ядро и цитоплазму к периферии клетки, при этом цитоплазма разделяется на отдельные тяжи. Тяжи цитоплазмы выявляются под микроскопом при большом увеличении в виде узких лент, отходящих лучами от ядра. В тяжах цитоплазмы проявляется зернистая структурированность, что связано с наличием в цитоплазме разнообразных органелл.

Корневой чехлик

Верхушка корня вытянута в конус и направлена к центру Земли. Она защищена корневым чехликом, который представляет собой колпачок на верхушке корня. Он состоит из нескольких слоев клеток. Эти клетки играют очень важную роль при углублении корня в почву. С поверхности чехлика клетки слущиваются, при этом выделяется слизь, которая смазывает почву и обеспечивает скольжение корня в глубину. С внутренней поверхности корневого чехлика идет постоянное пополнение клеток. Своей внутренней поверхностью корневой чехлик примыкает к самой верхушечной части корня, где постоянно происходит деление клеток, то есть находится образовательная ткань. За счет образовательной ткани верхушки корня и происходит постоянное пополнение клеток корневого чехлика. На препарате зона корневого чехлика хорошо отличается от верхушки корня. Корневой чехлик в виде короны обрамляет образовательную зону корня. Клетки в нем лежат более рыхло, чем на верхушке корпя. Наружный край неровный за счет слушивания клеток. Толщина слоя корневого чехлика в самом объемном месте - несколько десятков клеток.

Пыльца цветкового растения

Пыльца образуется внутри пыльника тычинки цветущего растения. Созревшая пыльца принимает участие в процессе опыления, то есть переносится с тычинок на рыльце пестика. Если опыление не произойдет, то плодов не образуется. Пыльца переносится ветром или насекомыми, в зависимости от того, к какому опылению приспособлен цветок. Пыльца может переноситься на рыльце пестика того же цветка, где она созрела (самоопыление), на рыльца пестиков других цветков того же растения, а так же на рыльца пестиков цветков других растений того же вида (перекрестное опыление). При анализе под микроскопом пыльца выявляется в виде зернышек с ярко выраженной морфологией. Поверхность пылинки покрыта сложной защитной оболочкой, па которой могут выявляться выступы или бугорки разнообразной формы. Эти структуры являются морфологическим видовым признаком растения. Под оболочками пыльцевого зерна находятся живые клетки. Одна клетка называется вегетативной. Когда пыльцевое зерно прорастает, попав на рыльце пестика, она образует пыльцевую трубку. Пыльцевая трубка проходит через отверстие в оболочке пыльцевого зерна и растет, продвигаясь внутрь рыльца и столбика пестика, по направлению к завязи. Кроме вегетативной клетки, в прорастающем пыльцевом зерне имеются мужские половые клетки - спермин, их два. Вот они-то и участвуют в процессе оплодотворения, перемещаясь по пыльцевой трубке к завязи.

Срез ветки дерева

Ветвление дерева - это процесс образования новых побегов. Увеличение числа побегов приводит к возрастанию поверхности листьев, обеспечивающих процесс фотосинтеза, с помощью которого растение производит все необходимые ему органические вещества. Длинную ось каждого побега составляет стебель. На поперечном срезе хорошо видно, что снаружи стебель покрыт кожицей, которая защищает стебель от воздействия окружающей среды. К кожице изнутри прилегает пробка - многослойная ткань, в которой нет живых клеток. На срезе в составе пробки видны толстые оболочки клеток, они не проницаемы для воды и воздуха. В некоторых местах пробки встречаются участки, где клетки не плотно прилегают друг к другу, а расположены рыхло. Это чечевички, структуры, через межклетники которых осуществляется газообмен. Под пробкой стебля находится кора. Она образована разными тканями. По самому краю корм залегают живые клетки с утолщенными оболочками и зернами крахмала. Внутренняя часть коры называется лубом, который включает проводящую ткань, паренхимные клетки и лубяные волокна. Главный проводящий элемент луба - ситовидные трубки с клетками спутницами. Ситовидные трубки образованы длинными живыми клетками, расположенными строго друг над другом. В местах соединения этих длинных клеток имеется множество мелких отверстий, совокупность которых напоминает сито, что объясняет название этих клеток. Ситовидные трубки собраны в пучки, между которыми находятся паренхимные клетки и лубяные волокна. Ситовидные трубки проводят вещества, синтезированные в листьях, к более низко расположенным частям растения. К центру от луба расположена древесина. Это другая проводящая ткань, она проводит воду и растворенные в ней минеральные и органические вещества от подземных органов - к надземным. Проводящую функцию в древесине выполняют сосуды и трахеиды. Сосуды состоят из мертвых клеток, оболочки которых утолщенные и одревесневшие. Перегородки между клетками отсутствуют, и, фактически, сосуд представляет собой трубку с многочисленными порами в стенке. Трахеиды так же состоят из мертвых клеток, но с перегородками. Клетки трахеид сильно вытянуты в длину и имеют заостренные концы, которые и образуют косые перегородки. Стенки трахеид так же одревесневшие, в них и в перегородках имеется множество пор. К центру от древесины расположена сердцевина. Она образована живыми паренхимными клетками, сходными с паренхимными клетками коры. Эти клетки выполняют запасающую функцию. Между лубом и древесиной залегает тонкий слой клеток, способных к делению, - это камбий. Благодаря делению клеток камбия стебель растет в толщину. Большее количество клеток камбия превращается в древесину, меньшее - в луб. Прирост древесины за год по толщине стебля называется годичным кольцом. По количеству годичных колец можно подсчитать возраст спиленной ветки.

Срез стебля травянистого растения

У травянистых растений отсутствуют прямостоячие надземные стебли, способные пережить зимы. Их стебли являются мягкими, сочными, одревеснение, если и наблюдается, то слабое. Основная масса стебля представлена паренхимой, камбий в проводящих пучках отсутствует или его деятельность выражена слабо. На данном препарате представлен поперечный срез однодольного травянистого растения. Снаружи стебель покрыт кутикулой. Это тонкая защитная пленка из жироподобных веществ, которая покрывает эпидермис, образованный клетками, лежащими в один слой. Под эпидермисом находится тонкий слой клеток, в которых могут быть хлоропласты. Глубже этого слоя находится основная ткань стебля - паренхима, в которой нет подразделения на кору и сердцевину. В паренхиме расположены проводящие пучки, в состав которых входят ситовидные трубки с клетками спутницами и 2 - 3 крупных сосуда. По периферии стебля пучки более мелкие, ближе к центру стебля - они гораздо крупнее. По сосудам поднимается вода из почвы с растворенными в ней минеральными и органическими веществами. По ситовидным трубкам происходит отток веществ, синтезированных в листьях, к более низким частям растения.

Поперечный срез корня

Корень - это вегетативный орган растения, который расположен в почве. Корень выполняет очень важные функции. Он закрепляет растение в почве, поглощает воду с растворенными в ней минеральными и органическими веществами, некоторые вещества, синтезированные в листьях растения, откладываются в клетках корня в запас. По длине корень делится на несколько зон, каждая из которых выполняет свои специфические функции. На данном препарате представлен срез корня через зону всасывания. Это зона корневых волосков. Корневые волоски представляют собой выросты клеток покровной ткани корня. Они могут достигать 1 см в длину. Эти структуры увеличивают всасывательную поверхность корня. К покровным тканям корня относятся 1 - 2 ряда клеток, покрывающих корень снаружи. Эти клетки плотно прилегают друг к другу и выделяют слизь. Под ними в глубине корня находится кора. Оболочки наружных слоев клеток коры опробковевают и выполняют защитные и опорные функции. Под этим защитным слоем клеток находится паренхима, представленная живыми клетками с тонкими стенками. В этих клетках откладываются запасные питательные вещества. Кора окружает центральный цилиндр корня. На границе центрального цилиндра залегает слой клеток, способных к делению, благодаря чему могут образовываться боковые и придаточные корни. Основную часть центрального цилиндра занимают проводящие ткани: сосуды и ситовидные трубки. Тяжи этих тканей тянутся вдоль всего корня и проходят, не прерываясь, в другие органы. По сосудам вода с растворенными минеральными солями поступает к надземным органам. По ситовидным трубкам растворы органических веществ, образованных в листьях в процессе фотосинтеза, поступают в паренхиму корня. Биологические исследования с использованием цифрового микроскопа. Лабораторная работа "Строение эпителиальных тканей".

В условиях перехода общего образования к профильному обучению учащихся на старшей ступени школы повышение качества биологического образования, уровня биологических знаний учащихся и выпускников общеобразовательных школ может быть достигнуто при внедрении в практику школ использования цифрового микроскопа.

Цифровой микроскоп может быть использован при проведении лабораторных работ элективных курсов повышенного уровня в которых углубленно изучают отдельные разделы основного курса биологии. Такие работы выходят за рамки базового образования и включают практические и лабораторные работы, проведение которых с использованием цифрового микроскопа позволит учащимся почувствовать себя исследователями при изучении тканей растений, животных, человека.

Использование на уроке биологии цифрового микроскопа совместно с компьютером позволяет получить увеличенное изображение изучаемого объекта (микропрепарата) на экране монитора (при работе в группе или в классах с малым числом учащихся) или на большом экране (при работе с целым классом) с помощью выносного проекционного устройства, подключаемого к компьютеру. Цифровой микроскоп позволяет

  ·   изучать исследуемый объект не одному ученику, а группе учащихся одновременно;

  ·   использовать изображения объектов в качестве демонстрационных таблиц для объяснения темы или при опросе учащихся;

  ·   применять разноуровневые задания для учеников одного класса;

  ·   создавать презентационные видеоматериалы по изучаемой теме;

  ·   использовать изображения объектов на бумажных носителях в качестве раздаточного или отчетного материала.

Использование цифрового микроскопа при проведении школьных биологических исследований дает ощутимый дидактический эффект в плане мотивации, систематизации и углубления знаний учеников, то есть формирования так называемых обучающих возможностей, развития способностей учащихся к приобретению и усвоению знаний.

Иксодовые клещиПрименение биотехнологииБиотехнология растенийРазвитие биологии в 17-18 вв., эволюционных идейСистема биологических наукЧерты рас как социального феноменаФизиологические теории мотивацийРоль аминокислотСоциальная геронтологияФакторы долголетия, продолжительности жизни



biofile.ru

Микромир: клеточное строение стебля

Goal

Изучить клеточное строение древесных стеблей цветковых растений.

Research question

Проблемный вопрос: «Почему клетки стебля такие разные?»

Equipment

  1. Фотоаппарат
  2. Цифровой микроскоп (световой)
  3. Лабораторное оборудование: лоток, скальпель, препаровальная игла, микротом, лупа, лезвие, пипетка, предметное и покровное стёкла
  4. Компьютер
  5. Сканер

Why use data from multiple participants?

Для того, чтобы разгадать тайны клеточного мира разных древесных стеблей растений, нужно большое количество участников проекта.

Investigation Protocol

  1. Рекомендация. Для проведения исследований необходим световой микроскоп с увеличением в 64,160 (возможно в 640) раз. Такой микроскоп есть в каждом кабинете биологии. С помощью него вы можете рассмотреть разные клетки стеблей, зарисовать их, выполнить обозначения-надписи и сделать сканы для заполнения анкеты. Если есть цифровой микроскоп, то с помощью него можно сделать фотографии, снять видео. Фотографии и сканы-рисунки перед заполнением анкеты попробуйте обработать в программе Microsoft Office Picture Manager: подобрать яркость, сделать обрезку и др. В этом случае фотографии получатся более чёткими, понятными. Хорошо бы сделать надписи разных структурных элементов стебля, о которых спрашивается в вопросах анкеты. Примеры таких надписей вы найдёте в протоколе исследований. Надписи можно сделать в программе Paint или на слайде в Microsoft Office PowerPoint с помощью функции "группировать" и затем "сохранить как рисунок".
  2. Найдите в разных информационных источниках материал о тканях и клетках стеблей однодольных и двудольных растений. Внимательно ознакомьтесь с ним.
  3. Прочитайте в параграфе 9 учебника автора В.В. Пасечника "Многообразие покрытосеменных растений" раздел "Внутреннее строение стебля" или в параграфе 10 учебника "Биология" И.Н. Пономарёвой раздел "Внутреннее строение стебля". Обратите внимание на разные структуры стебля: кожица, пробка, кора, луб, камбий, древесина, сердцевина. Подумайте об особенностях строения: какими тканями и клетками они образованы, какие функции выполняют. Все эти знания вам пригодятся для выполнения исследования. Для заполнения анкеты достаточно выполнить поперечные срезы и найти все структуры стебля, определить их строение и функции. Если вы хотите знать глубже строение стебля (например, для экзамена по биологии, олимпиады), то выполните все задания проекта, расположенные в медиатеке. Если у вас нет возможности сделать срезы самим, но в вашей школьной коллекции готовых препаратов есть срезы стебля липы, бузины, то все исследования можете провести на них.
  4. Выберите двудольное растение (кустарник, дерево) для исследования, например: бузину (кустарник), дуб, черёмуху, осину, клён ясенелистный, липу или другое. Сфотографируйте растение, особенно выделите на фотографии стебель крупным планом. Фотографии сохраните в папке на рабочем столе. Желательно все исследования и срезы выполнять на одном виде растения.
  5. Рассмотрите и найдите на коре небольшие бугорки с отверстиями. Это чечевички. Подумайте о их роли в жизни растения. Сфотографируйте кору с чечевичками крупным планом. Фотографии сохраните в папке на рабочем столе компьютера.
  6. Отделите (аккуратно срежьте) молодой однолетний побег (ветку) примерно 10 см. Сфотографируйте. Он тонкий, гибкий, зелёный. Удалите листья и почки, оставьте только стебель. Рассмотрите кожицу под лупой.
  7. На стебле сделайте поперечный надрез лезвием, зацепите пинцетом в месте разреза и снимите кожицу (эпидерму). Сделайте временный препарат. Рассмотрите под микроскопом при малом 16х4 и большом 16х10 или 16х40 увеличении. Найдите прозрачные клетки эпидермы и устьица. Подумайте, зачем они растению? Обратите внимание на клетки кожицы (эпидермы): сколько слоёв клеток, какую ткань образуют и какую функцию выполняют в растении. Возможно, слой эпидермы уже разрушился. Сделайте фотографии с помощью цифрового микроскопа (или выполните рисунок с препарата светового микроскопа), выполните обозначения. Сохраните в папке на рабочем столе.
  8. В междоузлии стебля сделайте поперечный срез. Постарайтесь, чтобы срез был тонким, в этом случае вы хорошо увидите все клетки разных структур стебля. В центре увидите клетки сердцевины и сфотографируйте её (или сделайте рисунок). Обратите внимание на крупные клетки с тонкими оболочками. Это запасающая ткань. У некоторых растений клетки сердцевины могут содержать хлоропласты. Рассмотрите готовый препарат среза ветки липы из школьной коллекции препаратов. От сердцевины отходят сердцевинные лучи через древесину и луб (часть вторичной коры). Состоят из клеток основной ткани. Какую функцию она выполняет? Например, сердцевинные лучи у липы на постоянном препарате школьной коллекции срезов. Найдите первичную и вторичную древесину, годичное кольцо прироста. Это все слои клеток древесины, образовавшееся весной, летом и осенью. Осенние клетки мелкие. Посчитайте количество годичных колец прироста. Что по ним можно определить? О чём свидетельствуют узкие годичные кольца? Чем отличается первичная древесина от вторичной? Почему в годичном кольце прироста сосуды разных диаметров? Сделайте несколько фотографий (или рисунок) и сохраните. Можно с помощью фотоаппарата сделать фотографии спила дерева, где хорошо видны: кора, сердцевина, сердцевинные лучи, годичные кольца прироста, первичная и вторичная древесина.
  9. Найдите на поперечном срезе камбий. Это слой живых узких длинных клеток образовательной ткани с тонкими оболочками между древесиной и корой. Как определить наличие камбия на срезе, если клетки всё-таки плохо заметны? Какую функцию в стебле выполняет камбий? Сделайте несколько фотографий крупным планом (или выполните рисунок) и сохраните для заполнения анкеты.
  10. Найдите кору, она образована остатками эпидермы, перидермой (первичная кора), лубом. Сначала рассмотрите остатки эпидермы, затем первичную кору (перидерму): найдите слой пробки (феллему), феллоген и феллодерму. Затем рассмотрим вторичную кору: луб (флоэму), паренхиму сердцевидных лучей, перициклическую зону. Флоэма состоит из ситовидных трубок с сопровождающими клетками; лубяных волокон. На срезе участки флоэмы видны в форме трапеций. Подумайте, какую функцию выполняют клетки вторичной коры? Например, структуры поперечного среза стебля клёна ясенелистного. Увеличение микроскопа 16х10. Надписи выполнены в программе Microsoft Office PowerPoint.
  11. В параграфе учебника или из других источников узнайте об отличии анатомического строения стеблей двудольных растений от однодольных. Запомните эти отличия. Подумайте, чем отличается анатомическое строение стебля травянистого растения от строения стебля древесных пород?
  12. Заполните анкету.
  13. Сделайте вывод по проблемному вопросу.
  14. Участвуйте в обсуждении проекта.
  15. Внимание! Фотографии из интернета или учебника не принимаются. К сожалению, анкеты будут заблокированы.

Safety tips

  • Соблюдайте правила техники безопасности при работе с колющими и режущими предметами.
  • Не используйте ядовитые растения, растения, вызывающие у вас аллергические реакции.
  • Аккуратно и бережно относитесь к растениям.

globallab.org

Как подготовить срез растения (микропрепарат).

Многие любители микроскопических исследований окружающей живой природы сталкиваются в первую очередь с изготовлением тончайших срезов растений. Ведь осуществить тонкий поперечный срез листа или стебля не так легко, как может показаться на первый взгляд. Срез растения должен получиться прозрачным и очень тонким, чтобы его можно было разглядеть под проходящим светом микроскопа.

Срез растения          Для получения таких тончайших срезов растений вам потребуется лезвие бритвы и морковка. Приготовим, например, поперечный срез какого-нибудь стебля растения. Необходимо в середине моркови вырезать полость, которая будет равняться диаметру стебля, а затем поместить в эту полость стебель таким образом, чтобы стебель немного выступал над поверхностью взятой морковки. А теперь приступим к самой важной части процесса – срезаем тончайший слой этого стебля. С самого начала все может получиться не так, как хотелось бы, но со временем вы набьете руку, приноровитесь и сможете готовить самые тончайшие срезы растений для ваших увлекательных исследований.

         Для того, чтобы сделать тонкий поперечный срез листа, нужно разрезать морковку вдоль, но не до конца, и лист растения поместить в полученный срез. У вас получатся своеобразные тиски из половинок моркови, которые будут зажимать между собой лист растения. Далее необходимо, как и в предыдущем примере со стеблем, отрезать лезвием бритвы тонкую пластинку.

        С помощью описанного метода возможно получить срезы различных растений, в том числе фруктов и семян. Однако твердые семена стоит предварительно замочить в воде. Если у вас совсем нет желания или достаточного времени на приготовление своих микропрепаратов, то специально для вас представлены уже готовые микропрепараты для микроскопии. Желаем удачных исследований и экспериментов!

В нашем магазине Вы можете приобрести наборы предметных и покровных стекол, а так же готовые препараты:

Оптические элементы микроскопа – объективы

Первая группа оптических элементов – это объективы, они состоят из сложной системы линз. Объективы находятся в револьверном устройстве, что позволяет производить их быструю смену, для получения различных увеличений.

Типы микроскопов

Какой микроскоп стоит покупать? Обычный или стереомикроскоп в качестве первого микроскопа для ребенка Это, пожалуй, самый распространенный вопрос на нашем ресурсе. Как и следовало ожидать, ответ зависит от уровня познавательных способностей вашего ребенка. Но есть некие принципы, которые мы обычно рекомендуем при выборе.

micromed.pro

Фрукты и овощи под микроскопом

Под микроскопом знакомые нам продукты выглядят просто невероятно.

Клубника

Фрукты и овощи под микроскопом - микрофотографии - 1Это молодой плод широко распространённой клубники садовой. Чётко видны отдельные «волоски» ягоды.

Брокколи

Фрукты и овощи под микроскопом - микрофотографии - 2Головка брокколи крупным планом.

Персик

Фрукты и овощи под микроскопом - микрофотографии - 3Ворсистая поверхность кожицы персика.

Чёрная шелковица

Фрукты и овощи под микроскопом - микрофотографии - 4Чёрная шелковица культивируется с древних времен, скорее всего, она родом из Китая.

Лук-порей

Фрукты и овощи под микроскопом - микрофотографии - 5Поперечное сечение листа лука-порея, основная губчатая ткань которого называется мезофилл. Толщина листа всего 1.2 мм.

Картофель

Фрукты и овощи под микроскопом - микрофотографии - 6Это крупный план на «глаз» картофеля с тремя развивающимися побегами, длина самого длинного из них равна около 4 мм.

Японская княженика

Фрукты и овощи под микроскопом - микрофотографии - 7Эта родственница малины и ежевики произрастает в северном Китае, Корее и Японии. Всё растение, в том числе чашелистики, которые охватывают плод, покрыты клейкими волосками.

Цветная капуста

Фрукты и овощи под микроскопом - микрофотографии - 8А так при большом увеличении выглядят съедобные части цветной капусты. Это мясистые, незрелые головки овоща.

Фрукты и овощи под микроскопом - микрофотографии - 9

Эти любопытные микрофотографии создали учёные-биологи Вольфганг Стаппи, Роб Кесселер и Мэдлин Харлей. Их изображения вошли в книгу «Чудеса растительного царства: микромир раскрыт» / Wonders of the Plant Kingdom: A Microcosm Revealed.

Facebook

Вконтакте

Twitter

Google+

Pinterest

Одноклассники

cameralabs.org

Поперечный срез стебля растения под микроскопом

Купить!

Изображение помещёно в вашу корзину покупателя. Вы можете перейти в корзину для оплаты или продолжить выбор покупок. Перейти в корзину…

удалить из корзины

Размеры в сантиметрах указаны для справки, и соответствуют печати с разрешением 300 dpi. Купленные файлы предоставляются в формате JPEG.

¹ Стандартная лицензия разрешает однократную публикацию изображения ограниченным тиражом в качестве иллюстрации к информационному материалу или обложки печатного издания;

² Расширенная лицензия разрешает прочие виды использования, в том числе в рекламе, упаковке, дизайне сайтов и так далее;

Подробнее о различиях в лицензиях

³ Для приобретения лицензии Печать в частных целях, пожалуйста, свяжитесь с нами по телефону или e-mail: roed?rolirr! u, asel?solirr! u.

* Пакеты изображений дают значительную экономию при покупке большого числа работ (подробнее)

Размер оригинала: 2560×1920 пикс. (4.9 Мп)

Указанная в таблице цена складывается из стоимости лицензии на использование изображения (75% полной стоимости) и стоимости услуг фотобанка (25% полной стоимости). Это разделение проявляется только в выставляемых счетах и в конечных документах (договорах, актах, реестрах), в остальном интерфейсе фотобанка всегда присутствуют полные суммы к оплате.

Внимание! Использование произведений из фотобанка возможно только после их покупки. Любое иное использование (в том числе в некоммерческих целях и со ссылкой на фотобанк) запрещено и преследуется по закону.

lori.ru

Стебель липы под микроскопом - поперечный срез - фото - строение - приготовление микропрепарата

Вернуться к списку Задать свой вопрос

 

 

Деревянистые листопадные растения играют важную роль в деятельности человека, в том числе в науке. Ботаника формировалась и развивалась на опыте их описания, ведь растут они в лесу, а лесистая местность, как экосистема, распространена на большой территории суши. Липа является приспособленным к определенным условиям среды деревом с разветвлённым стволом, ученые выделяют более сорока видов. Зацветает она только через двадцать лет, но затем продолжает цвести ежегодно, испуская приятный сладковатый запах. Липовый цвет и мед широко используются в пищевой и медицинской отрасли. Для просмотра поперечного среза стебля под микроскопом рекомендуется предварительно подготовить микропрепарат. Наблюдение необходимо осуществлять в проходящем освещении, т.е. включается подсветка, расположенная под конденсором.  

Стебель - это удлиненный вегетативный орган, надземный восходящий побег, имеющий срединную линию и являющийся частью густой кроны. Опорой для него служит главный мощный ствол, который может достигать в диаметре 3-4 метра. Лето - наиболее благоприятное время подготовки биологического материала для дальнейшего микрокопирования, в этот период происходит интенсивный обмен веществ, ассимиляция, поглощение энергии, первичная кора активно вытесняется вторичной.

Приготовление препарата для изучения в поперечном сечении:

  • При помощи любительского круглого микротома или безопасным лезвием получить тонкий отрез, толщиной 0,3-0,4 миллиметра. Он должен проходить перпендикулярно оси;
  • Подсушить при комнатной температуре, над пламенем горелки или в термостате;
  • Произвести фиксацию осмием для остановки жизнедеятельности клеток;
  • Препаровальной иглой поместить образец на предметное стекло;
  • В качестве красителя пипеткой добавить каплю анилина, на воздухе приобретающего бурую окраску с красноватым оттенком;
  • Накрыть покровным стеклом и разместить под металлическими зажимами столика;

Строение стебля, наблюдаемое визуально в микроскоп на увеличении 200 крат:

  • Кожица с устьицами, предназначенными для газообмена;
  • Остатки эпидермиса перидермы;
  • Кора с колленхимой;
  • Слои твердого и мягкого луба;
  • Ситовидные трубки проводящей ткани;
  • Волокна осенней и весенней древесины;
  • Камбий, формирующий ксилему и флоэму;
  • Сердцевина и сердцевинные лучи;
  • Растительные клетки – запасающие и клетки-спутницы;

Поперечный срез стебля липы просматривается на максимальной кратности до 400x, первоначальный поиск в светлом поле и фокусировка осуществляется на приближении 40x, достигаемом сочетанием объектива 4x и окуляра 10x, это обеспечивает хороший угол обзора и позволяет правильно отцентрировать микрообразец. Результат исследований можно зафиксировать в фотографиях после подключения цифрового видеоокуляра, выводящего картинку через порт USB на компьютер. Программа позволит сделать графическую обработку и измерить интересующие наблюдателя структурные элементы среза.

Приборы, рекомендуемые для описанных целей и оснащенные качественной ахроматической оптикой: Биомед 1, Микромед С-12, Levenhuk 320. 

 

oktanta.ru

Приготовление препаратов для микроскопирования

Методика приготовления постоянных микропрепаратов

Как понятно из заголовка отличие временного препарата, который может храниться  относительно не долгий отрезок времени, постоянный препарат может храниться многие годы.

Существуют готовые наборы для изготовления постоянных препаратов,  один из таких наборов изображен ниже.

Конечно, данный набор имеет свои ограничения для изготовления препаратов.

Обязательным  условием для долгосрочного хранения препарата из растительного или животного материала является его фиксация.  Фиксирующих жидкостей много, самые доступные из  них:  этиловый спирт  и продающийся в аптеках препарат на основе формалина (Формидрон) Состав: 100 мл препарата содержат 10 г раствора формальдегида в пересчете на 37 % формальдегид; вспомогательные вещества: спирт этиловый 96 %, одеколон, вода очищенная.

Препарат ФОРМИДРОН, может быть использован для создания архива биологических объектов, вспомогательные вещества входящие в аптечный препарат, не сколько не мешают  в сохранении объекта. 

ВНИМАНИЕ ФОРМАЛЬДЕГИД ОБЛАДАЕТ РАЗДРАЖАЮЩИМ ДЕЙСТВИЕМ.

Если на дне банки с 40 % формалином образовался осадок белого цвета (параформальдегид), то его можно растворить, подогрев до 70-80 °С (в вытяжном шкафу! или на открытом воздухе), и использовать для фиксации. 

Спирт-формол по Шафферу - 10%  формалин, который готовят из 1 части  40% формалина и 2-3 частей 96 % спирта. Продолжительность фиксации 24-48 ч. Дальнейшая промывка в воде не требуется, и материал сразу же помещают в 96 % спирт. Выпадение белого осадка никак не сказываеться на свойстве фиксатора.

ПРАВИЛА РАБОТЫ С ФИКСАТОРАМИ

Практически все фиксаторы относятся к токсичным веществам поэтому необходимо соблюдать правила техники безопасности при работе с реактивами.

Фиксация необходима с целью остановки (прекращения) жизнедеятельности клеток. Для этого объект помещают в соответствующий фиксатор  на время от нескольких минут до нескольких часов.

ЗАКЛЮЧЕНИЕ ПРЕПАРАТА ПОД ПОКРОВНОЕ СТЕКЛО

Большинство используемых в цитологии и гистологии красителей представляет собой водные растворы. Чтобы сделать временный препарат, срез, вынув из водного раствора красителя, промывают и заключают в глицерин. Приготовить постоянный препарат несколько сложнее: необходимо покрыть срезы покровным стеклом, заключив их в прозрачную затвердевающую среду. Можно, ополоснув срезы дистиллированной водой, капнуть на них разогретый раствор желатины. Но большую сохранность и лучшее качество препаратов можно получить, заключив их в канадский бальзам (прозрачную смолу пихты с показателем преломления n= 1,535). Поскольку канадский бальзам не смешивается с водой, но растворим в ксилоле  (толуоле, бензоле), создается необходимость провести препарат по «проводке» для срезов, но в направлении, противоположном тому, в которое стекла велись для удаления парафина и подготовке к окраске. При этом нужно помнить, что даже незначительное присутствие воды в срезе сделает препарат мутным, непригодным для изучения. Поэтому переносить срезы по проводке от воды к толуолу надо медленно, погружая стекло в стаканчик со спиртом или толуолом на 2—3 мин. Схема проведения срезов может быть следующей:      

дистиллированная вода — ополоснуть, 

спирт 70%-ный — 2 мин, 

96%-ный — 2 мин, 

100%-ный —3 мин, 

Ксилол I — 2 мин, 

Ксилол II — 3—5 мин. 

Надо иметь в виду, что некоторые красители легко вымываются из препаратов как в воде, так и в спиртах. Поэтому в некоторых случаях приходится избегать промывки препаратов и проведения через спирты низких концентраций. Чтобы достигнуть обезвоживания, приходится препараты осторожно промокать фильтровальной бумагой, опуская их сразу в 96%- или 100%-ный спирт, можно заменять этиловые спирты ацетоном или изоамиловым спиртом.

Итак, задача, которая стоит при подготовке препарата для монтирования его под покровное стекло, состоит в том, чтобы, не вымыв красителя, добиться полного обезвоживания среза. Достигается это проводкой по спиртам возрастающей крепости, вплоть до 100%. Обработка срезов ксилолом имеет двоякое значение: с одной стороны, в нем достигается просветление препарата, усиливается его прозрачность (краситель при этом из препарата не вымывается), с другой стороны, создаются благоприятные условия для дальнейшего пропитывания среза канадским бальзамом, который растворим в ксилоле. Само заключение среза под покровное стекло осуществляется быстро, пока на препарате не испарился ксилол. Капля бальзама наносится на покровное стекло (оно должно быть чистым и сухим), и покровное стекло быстро перевертывается над срезом. Можно капать бальзам на предметное стекло на поверхность среза и быстро покрывать его покровным стеклом. Канадский бальзам должен иметь консистенцию растительного масла (или гуще). Через 1—2 дня бальзам застывает.

Вместо канадского бальзама можно использовать синтетическую среду на основе полистирола.

Для этого берут 25г бесцветного полистирола, 5 мл дибутилфталата (пластификатор может быть любой) и доливают ксилолом до 100 мл. Раствор должен иметь консистенцию меда.  Заключение  среза под покровное стекло не отличается, от выше описанного.

Несомненным плюсом синтетического бальзама это инертность и более лучшая сохранность красителей.

Этапы приготовления постоянного микропрепарата 

1

Изучаемый объект помещают  в раствор 1части ФОРМИДРОНА  с 2 частями воды на несколько дней. 

Для мазков это время ограничивается 15 минутами и формидрон разводить не следует.

В случае использования этилового спирта время фиксации составляет 15-20 мин.

2

После фиксации  объект  следует отмыть от фиксатора, для этого его помещают на несколько часов в проточную воду. Для удержания объекта при отмывке удобно поместить его  в ситечко-шарик для заваривания чая. Исследуемый объект переносят в батарею спиртов с целью удаления воды.

Мазки ополаскивают в проточной воде в течение 3-5 минут. Струя воды должна быть не сильной, мазок сушат.

3

Далее если необходимо препарат может быть окрашен одним из доступных  вам красителей.

4

После окраски препарат готовят к заключению в монтирующую среду.

Приготовить батарею ( ряд флаконов ) растворов спиртов возрастающей крепости  для удаления воды.  Возможно использовать как этиловый спирт (антисептический раствор) так и Изопропиловый спирт (ИПС) который можно приобрести в магазинах специализирующихся на продаже радиодеталей.

Последовательно наливаем в лабораторные стаканчики этанол или изопропанол в концентрациях 50%, 70%, 96%, 99%.

Объект помещают в  стаканчик,  начиная с 50% этанолом на 10 минут. Затем перемещают объект в стаканчики с все более высокой концентрацией спирта, выдерживая в каждом по 10 минут. В процессе такого перемещения этанол будет плавно вытягивать воду из объекта. Помещать объекты сразу в концентрированный этанол нельзя, так как в этом случае, быстро выходящая из клеток вода может повредить клеточные оболочки

Для мазков столь долгое пребывание в спиртах не требуется , достаточно 30-60 секунд, так как некоторые красители могут вымываться из мазка.

5

Если Вы хотите заключить препарат  в канадский бальзам, обезвоженный материал переносят в уайт-спирит или ксилол  на 5-6 часов,  Канадский бальзам можно заменить на раствор канифоли  в  уайт-спирите(ксилоле), по консистенции напоминающий сироп.

6

Если препарат заключается в глицерин-желатиновую смесь, то объект переносят не уайт-спирит, а в глицерин на несколько часов ( глицерин, аптечный)

Заключение объекта в глицерин-желатин. 

Последний приготовляется следующим образом. Чистый желатин (7 г) размачивают в течение 2—3 ч в 42 см3 дистиллированной воды, добавляют 50 г глицерина и 0,5 г кристаллической карболовой кислоты. Все вместе нагревается при помешивании на водяной бане, фильтруется и охлаждается. При появлении осадка тщательно профильтровать через стекловату. Готовый «глицерин-желатин» хранить в герметичном сосуде. При комнатной температуре глицерин-желатин застывает.

Небольшой кусочек глицерин-желатина иглой или скальпелем переносят на предметное стекло. Последнее слегка нагревают на пламени спиртовки, глицерин-желатин расплавляется. В него из глицерина переносится объект и покрывается покровным стеклом.

Мазок заключают  следующим образом, кусочек глицерин-желатина помещают на покровное стекло Последнее слегка нагревают на спиртовке, глицерин-желатин расплавляется, объект покрывается покровным стеклом.

Пространство между предметным и покровным стеклом заполняется монтирующей средой, которая, закрепляет покровное и предметное стекла и консервирует объект. Самым главным требованием к монтирующей среде является соответствие ее коэффициента преломления света к аналогичному показателю стекла. 

7

Заключение объекта в канифоль или канадский бальзам

На покровное стекло по центру наносят каплю или, если стекло длинное, две капли жидкого раствора канифоли. Покровное стекло помещают каплей вниз  и слегка прижимают

Края покровного стекла не следует вытирать ватой или марлей, смоченной ксилолом, так как при этом часть смолы может растечься по чистой поверхности покровного стекла. Засыхая, она образует неровности, которые мешают наблюдению под микроскопом и от которых очень трудно избавиться.

В результате неполного обезвоживания в окрашенных заключенных препаратах часто образуются непрозрачные или мутные зоны. Под микроскопом в таком участке среза и над ним обнаруживаются многочисленные мелкие капельки воды, окраска сильно выцветает. Чтобы избавиться от этого, снимают покровное стекло, смывают ксилолом синтетическую смолу или бальзам, обезвоживают срез в 100%-ном спирте, ацетоне или изопропиловом спирте, просветляют в смеси ксилола с обезвоживающим агентом и в 2-3 сменах свежего ксилола и вновь заключают.

Синтетическая монтирующая среда на основе полистирола.

Полистирол (бесцветный)-25г.(можно использовать пищевые стаканчики)

Дибутилфталат-5мл (любой доступный пластификатор, если не добавлять, полистирол трескается после высыхания)

Ксилол до 100 мл.

Растворение происходит в течение нескольких дней, раствор должен иметь консистенцию меда.

labx.narod.ru


Sad4-Karpinsk | Все права защищены © 2018 | Карта сайта