Лечение растениями н г ковалева: Книга: «Лечение растениями. Очерки по фитотерапии» — Н. Ковалева. Купить книгу, читать рецензии

Содержание

Страница 404

Объявления

Свежие публикации

Случайный кадр

Министерство юстиции РФ

информирует

Главная / Страница 404

Извините! Страница не найдена!

Возможные причины:

она была удалена,

сменен адресс ссылки,

вы не верно ввели ссылку.

Сегодня 2153 просмотра этой страницы

Поиск по сайту

БЕСПЛАТНАЯ

ЮРИДИЧЕСКАЯ ПОМОЩЬ

Юрисконсульт

Яркина

Олеся Александровна

пятница 13. 00-15.00

Подробнее >

СТРАНИЧКА

СОЦИАЛЬНОГО ПЕДАГОГА

Телефон

+7 (84593) 7-43-84

Подробнее >

Телефон «Горячей линии»

Общественной палаты Саратовской области

+7 (8452) 277-567

Подробнее >

Саратовская областная

организация Профсоюза

работников здравоохранения РФ

Пн

Вт

Ср

Чт

Пт

Сб

Вс

12345678910111213141516171819202122232425262728293031

Опрос

Довольны ли вы качеством услуг предоставляемых в нашем учебном заведении?

Полностью доволен

Скорее доволен

Среднее

Неудовлетворительно

Очень плохо

Посмотреть результаты

Учебно-методическое обеспечение элективного курса «Лекарственные растения ботанического сада УрО РАН» во внеурочной деятельности по биологии

%PDF-1. 5
%
1 0 obj
>
/Metadata 4 0 R
>>
endobj
5 0 obj
/Title
>>
endobj
2 0 obj
>
endobj
3 0 obj
>
endobj
4 0 obj
>
stream

Учебно-методическое обеспечение элективного курса «Лекарственные растения ботанического сада УрО РАН» во внеурочной деятельности по биологии

Аташова Д. М.1.52019-06-18T12:16:42+05:002019-06-18T12:16:42+05:00

endstream
endobj
6 0 obj
>
/ProcSet [/PDF /Text /ImageB /ImageC /ImageI]
/XObject >
>>
/MediaBox [0 0 595. 32 841.92]
/Contents [89 0 R 90 0 R 91 0 R]
/Group >
/Tabs /S
/StructParents 0
/Annots [92 0 R]
>>
endobj
7 0 obj
>
/ExtGState >
/ProcSet [/PDF /Text /ImageB /ImageC /ImageI]
>>
/MediaBox [0 0 595.32 841.92]
/Contents 96 0 R
/Group >
/Tabs /S
/StructParents 1
>>
endobj
8 0 obj
>
/ExtGState >
/ProcSet [/PDF /Text /ImageB /ImageC /ImageI]
>>
/MediaBox [0 0 595.32 841.92]
/Contents 97 0 R
/Group >
/Tabs /S
/StructParents 2
>>
endobj
9 0 obj
>
/ExtGState >
/ProcSet [/PDF /Text /ImageB /ImageC /ImageI]
>>
/MediaBox [0 0 595.32 841.92]
/Contents 99 0 R
/Group >
/Tabs /S
/StructParents 3
>>
endobj
10 0 obj
>
/ExtGState >
/ProcSet [/PDF /Text /ImageB /ImageC /ImageI]
>>
/MediaBox [0 0 595.32 841.92]
/Contents 100 0 R
/Group >
/Tabs /S
/StructParents 4
>>
endobj
11 0 obj
>
/ExtGState >
/ProcSet [/PDF /Text /ImageB /ImageC /ImageI]
>>
/MediaBox [0 0 595.32 841.92]
/Contents 101 0 R
/Group >
/Tabs /S
/StructParents 5
>>
endobj
12 0 obj
>
/ExtGState >
/ProcSet [/PDF /Text /ImageB /ImageC /ImageI]
>>
/MediaBox [0 0 595. 32 841.92]
/Contents 102 0 R
/Group >
/Tabs /S
/StructParents 6
>>
endobj
13 0 obj
>
/ExtGState >
/ProcSet [/PDF /Text /ImageB /ImageC /ImageI]
>>
/MediaBox [0 0 595.32 841.92]
/Contents 104 0 R
/Group >
/Tabs /S
/StructParents 7
>>
endobj
14 0 obj
>
/ExtGState >
/ProcSet [/PDF /Text /ImageB /ImageC /ImageI]
>>
/MediaBox [0 0 595.32 841.92]
/Contents 105 0 R
/Group >
/Tabs /S
/StructParents 8
>>
endobj
15 0 obj
>
/ExtGState >
/ProcSet [/PDF /Text /ImageB /ImageC /ImageI]
>>
/MediaBox [0 0 595.32 841.92]
/Contents 106 0 R
/Group >
/Tabs /S
/StructParents 9
>>
endobj
16 0 obj
>
/ExtGState >
/ProcSet [/PDF /Text /ImageB /ImageC /ImageI]
>>
/MediaBox [0 0 595.32 841.92]
/Contents 107 0 R
/Group >
/Tabs /S
/StructParents 10
>>
endobj
17 0 obj
>
/ExtGState >
/ProcSet [/PDF /Text /ImageB /ImageC /ImageI]
>>
/MediaBox [0 0 595.32 841.92]
/Contents 108 0 R
/Group >
/Tabs /S
/StructParents 11
>>
endobj
18 0 obj
>
/ExtGState >
/ProcSet [/PDF /Text /ImageB /ImageC /ImageI]
>>
/MediaBox [0 0 595. 32 841.92]
/Contents 111 0 R
/Group >
/Tabs /S
/StructParents 12
>>
endobj
19 0 obj
>
/ExtGState >
/ProcSet [/PDF /Text /ImageB /ImageC /ImageI]
>>
/MediaBox [0 0 595.32 841.92]
/Contents 112 0 R
/Group >
/Tabs /S
/StructParents 13
>>
endobj
20 0 obj
>
/ExtGState >
/ProcSet [/PDF /Text /ImageB /ImageC /ImageI]
>>
/MediaBox [0 0 595.32 841.92]
/Contents 113 0 R
/Group >
/Tabs /S
/StructParents 14
>>
endobj
21 0 obj
>
/ExtGState >
/ProcSet [/PDF /Text /ImageB /ImageC /ImageI]
>>
/MediaBox [0 0 595.32 841.92]
/Contents 114 0 R
/Group >
/Tabs /S
/StructParents 15
>>
endobj
22 0 obj
>
/ExtGState >
/ProcSet [/PDF /Text /ImageB /ImageC /ImageI]
>>
/MediaBox [0 0 595.32 841.92]
/Contents 115 0 R
/Group >
/Tabs /S
/StructParents 16
>>
endobj
23 0 obj
>
/ExtGState >
/ProcSet [/PDF /Text /ImageB /ImageC /ImageI]
>>
/MediaBox [0 0 595.32 841.92]
/Contents 116 0 R
/Group >
/Tabs /S
/StructParents 17
>>
endobj
24 0 obj
>
/ExtGState >
/ProcSet [/PDF /Text /ImageB /ImageC /ImageI]
>>
/MediaBox [0 0 595. 32 841.92]
/Contents 117 0 R
/Group >
/Tabs /S
/StructParents 18
>>
endobj
25 0 obj
>
/ExtGState >
/ProcSet [/PDF /Text /ImageB /ImageC /ImageI]
>>
/MediaBox [0 0 595.32 841.92]
/Contents 118 0 R
/Group >
/Tabs /S
/StructParents 19
>>
endobj
26 0 obj
>
/ExtGState >
/ProcSet [/PDF /Text /ImageB /ImageC /ImageI]
>>
/MediaBox [0 0 595.32 841.92]
/Contents 121 0 R
/Group >
/Tabs /S
/StructParents 20
>>
endobj
27 0 obj
>
/ExtGState >
/ProcSet [/PDF /Text /ImageB /ImageC /ImageI]
>>
/MediaBox [0 0 595.32 841.92]
/Contents 122 0 R
/Group >
/Tabs /S
/StructParents 21
>>
endobj
28 0 obj
>
/ExtGState >
/ProcSet [/PDF /Text /ImageB /ImageC /ImageI]
>>
/MediaBox [0 0 595.32 841.92]
/Contents 123 0 R
/Group >
/Tabs /S
/StructParents 22
>>
endobj
29 0 obj
>
/ExtGState >
/ProcSet [/PDF /Text /ImageB /ImageC /ImageI]
>>
/MediaBox [0 0 595.32 841.92]
/Contents 124 0 R
/Group >
/Tabs /S
/StructParents 23
>>
endobj
30 0 obj
>
/ExtGState >
/ProcSet [/PDF /Text /ImageB /ImageC /ImageI]
>>
/MediaBox [0 0 595. 32 841.92]
/Contents 125 0 R
/Group >
/Tabs /S
/StructParents 24
>>
endobj
31 0 obj
>
/ExtGState >
/ProcSet [/PDF /Text /ImageB /ImageC /ImageI]
>>
/MediaBox [0 0 595.32 841.92]
/Contents 126 0 R
/Group >
/Tabs /S
/StructParents 25
>>
endobj
32 0 obj
>
/ExtGState >
/ProcSet [/PDF /Text /ImageB /ImageC /ImageI]
>>
/MediaBox [0 0 595.32 841.92]
/Contents 127 0 R
/Group >
/Tabs /S
/StructParents 26
>>
endobj
33 0 obj
>
/ExtGState >
/ProcSet [/PDF /Text /ImageB /ImageC /ImageI]
>>
/MediaBox [0 0 595.32 841.92]
/Contents 128 0 R
/Group >
/Tabs /S
/StructParents 27
>>
endobj
34 0 obj
>
/ExtGState >
/ProcSet [/PDF /Text /ImageB /ImageC /ImageI]
>>
/MediaBox [0 0 595.32 841.92]
/Contents 129 0 R
/Group >
/Tabs /S
/StructParents 28
>>
endobj
35 0 obj
>
/ExtGState >
/ProcSet [/PDF /Text /ImageB /ImageC /ImageI]
>>
/MediaBox [0 0 595.32 841.92]
/Contents 130 0 R
/Group >
/Tabs /S
/StructParents 29
>>
endobj
36 0 obj
>
/ExtGState >
/ProcSet [/PDF /Text /ImageB /ImageC /ImageI]
>>
/MediaBox [0 0 595. 32 841.92]
/Contents 132 0 R
/Group >
/Tabs /S
/StructParents 30
>>
endobj
37 0 obj
>
/ExtGState >
/ProcSet [/PDF /Text /ImageB /ImageC /ImageI]
>>
/MediaBox [0 0 595.32 841.92]
/Contents 133 0 R
/Group >
/Tabs /S
/StructParents 31
>>
endobj
38 0 obj
>
/ExtGState >
/ProcSet [/PDF /Text /ImageB /ImageC /ImageI]
>>
/MediaBox [0 0 595.32 841.92]
/Contents 134 0 R
/Group >
/Tabs /S
/StructParents 32
>>
endobj
39 0 obj
>
/ExtGState >
/ProcSet [/PDF /Text /ImageB /ImageC /ImageI]
>>
/MediaBox [0 0 595.32 841.92]
/Contents 135 0 R
/Group >
/Tabs /S
/StructParents 33
>>
endobj
40 0 obj
>
/ExtGState >
/ProcSet [/PDF /Text /ImageB /ImageC /ImageI]
>>
/MediaBox [0 0 595.32 841.92]
/Contents 137 0 R
/Group >
/Tabs /S
/StructParents 34
>>
endobj
41 0 obj
>
/ExtGState >
/ProcSet [/PDF /Text /ImageB /ImageC /ImageI]
>>
/MediaBox [0 0 595.32 841.92]
/Contents 138 0 R
/Group >
/Tabs /S
/StructParents 35
>>
endobj
42 0 obj
>
/ExtGState >
/ProcSet [/PDF /Text /ImageB /ImageC /ImageI]
>>
/MediaBox [0 0 595. 32 841.92]
/Contents 140 0 R
/Group >
/Tabs /S
/StructParents 36
>>
endobj
43 0 obj
>
/ExtGState >
/ProcSet [/PDF /Text /ImageB /ImageC /ImageI]
>>
/MediaBox [0 0 595.32 841.92]
/Contents 141 0 R
/Group >
/Tabs /S
/StructParents 37
>>
endobj
44 0 obj
>
/ExtGState >
/ProcSet [/PDF /Text /ImageB /ImageC /ImageI]
>>
/MediaBox [0 0 595.32 841.92]
/Contents 142 0 R
/Group >
/Tabs /S
/StructParents 38
>>
endobj
45 0 obj
>
/ExtGState >
/ProcSet [/PDF /Text /ImageB /ImageC /ImageI]
>>
/MediaBox [0 0 595.32 841.92]
/Contents 143 0 R
/Group >
/Tabs /S
/StructParents 39
>>
endobj
46 0 obj
>
/ExtGState >
/ProcSet [/PDF /Text /ImageB /ImageC /ImageI]
>>
/MediaBox [0 0 595.32 841.92]
/Contents 144 0 R
/Group >
/Tabs /S
/StructParents 40
>>
endobj
47 0 obj
>
/ExtGState >
/ProcSet [/PDF /Text /ImageB /ImageC /ImageI]
>>
/MediaBox [0 0 595.32 841.92]
/Contents 145 0 R
/Group >
/Tabs /S
/StructParents 41
>>
endobj
48 0 obj
>
/ExtGState >
/ProcSet [/PDF /Text /ImageB /ImageC /ImageI]
>>
/MediaBox [0 0 595. 32 841.92]
/Contents 146 0 R
/Group >
/Tabs /S
/StructParents 42
>>
endobj
49 0 obj
>
/ExtGState >
/ProcSet [/PDF /Text /ImageB /ImageC /ImageI]
>>
/MediaBox [0 0 595.32 841.92]
/Contents 147 0 R
/Group >
/Tabs /S
/StructParents 43
>>
endobj
50 0 obj
>
/ExtGState >
/ProcSet [/PDF /Text /ImageB /ImageC /ImageI]
>>
/MediaBox [0 0 595.32 841.92]
/Contents 149 0 R
/Group >
/Tabs /S
/StructParents 44
>>
endobj
51 0 obj
>
/ExtGState >
/ProcSet [/PDF /Text /ImageB /ImageC /ImageI]
>>
/MediaBox [0 0 595.32 841.92]
/Contents 150 0 R
/Group >
/Tabs /S
/StructParents 45
>>
endobj
52 0 obj
>
/ExtGState >
/ProcSet [/PDF /Text /ImageB /ImageC /ImageI]
>>
/MediaBox [0 0 595.32 841.92]
/Contents 151 0 R
/Group >
/Tabs /S
/StructParents 46
>>
endobj
53 0 obj
>
/ExtGState >
/ProcSet [/PDF /Text /ImageB /ImageC /ImageI]
>>
/MediaBox [0 0 595.32 841.92]
/Contents 152 0 R
/Group >
/Tabs /S
/StructParents 47
>>
endobj
54 0 obj
>
/ExtGState >
/ProcSet [/PDF /Text /ImageB /ImageC /ImageI]
>>
/MediaBox [0 0 595. 32 841.92]
/Contents 153 0 R
/Group >
/Tabs /S
/StructParents 48
>>
endobj
55 0 obj
>
/ExtGState >
/ProcSet [/PDF /Text /ImageB /ImageC /ImageI]
>>
/MediaBox [0 0 595.32 841.92]
/Contents 154 0 R
/Group >
/Tabs /S
/StructParents 49
>>
endobj
56 0 obj
>
/ProcSet [/PDF /Text /ImageB /ImageC /ImageI]
>>
/MediaBox [0 0 595.32 841.92]
/Contents 155 0 R
/Group >
/Tabs /S
/StructParents 50
>>
endobj
57 0 obj
>
/ExtGState >
/ProcSet [/PDF /Text /ImageB /ImageC /ImageI]
>>
/MediaBox [0 0 595.32 841.92]
/Contents 156 0 R
/Group >
/Tabs /S
/StructParents 51
>>
endobj
58 0 obj
>
/ExtGState >
/ProcSet [/PDF /Text /ImageB /ImageC /ImageI]
>>
/MediaBox [0 0 595.32 841.92]
/Contents 157 0 R
/Group >
/Tabs /S
/StructParents 52
>>
endobj
59 0 obj
>
/ExtGState >
/ProcSet [/PDF /Text /ImageB /ImageC /ImageI]
>>
/MediaBox [0 0 595.32 841.92]
/Contents 158 0 R
/Group >
/Tabs /S
/StructParents 53
>>
endobj
60 0 obj
>
/ExtGState >
/ProcSet [/PDF /Text /ImageB /ImageC /ImageI]
>>
/MediaBox [0 0 595. 32 841.92]
/Contents 159 0 R
/Group >
/Tabs /S
/StructParents 54
>>
endobj
61 0 obj
>
/ExtGState >
/ProcSet [/PDF /Text /ImageB /ImageC /ImageI]
>>
/MediaBox [0 0 595.32 841.92]
/Contents 160 0 R
/Group >
/Tabs /S
/StructParents 55
>>
endobj
62 0 obj
>
/ExtGState >
/ProcSet [/PDF /Text /ImageB /ImageC /ImageI]
>>
/MediaBox [0 0 595.32 841.92]
/Contents 161 0 R
/Group >
/Tabs /S
/StructParents 56
>>
endobj
63 0 obj
>
/ExtGState >
/ProcSet [/PDF /Text /ImageB /ImageC /ImageI]
>>
/MediaBox [0 0 595.32 841.92]
/Contents 162 0 R
/Group >
/Tabs /S
/StructParents 57
>>
endobj
64 0 obj
>
/ExtGState >
/ProcSet [/PDF /Text /ImageB /ImageC /ImageI]
>>
/MediaBox [0 0 595.32 841.92]
/Contents 163 0 R
/Group >
/Tabs /S
/StructParents 58
>>
endobj
65 0 obj
>
/ExtGState >
/ProcSet [/PDF /Text /ImageB /ImageC /ImageI]
>>
/MediaBox [0 0 595.32 841.92]
/Contents 164 0 R
/Group >
/Tabs /S
/StructParents 59
>>
endobj
66 0 obj
>
/ExtGState >
/ProcSet [/PDF /Text /ImageB /ImageC /ImageI]
>>
/MediaBox [0 0 595. 32 841.92]
/Contents 165 0 R
/Group >
/Tabs /S
/StructParents 60
>>
endobj
67 0 obj
>
/ExtGState >
/ProcSet [/PDF /Text /ImageB /ImageC /ImageI]
>>
/MediaBox [0 0 595.32 841.92]
/Contents 166 0 R
/Group >
/Tabs /S
/StructParents 61
>>
endobj
68 0 obj
>
/ExtGState >
/ProcSet [/PDF /Text /ImageB /ImageC /ImageI]
>>
/MediaBox [0 0 595.32 841.92]
/Contents 167 0 R
/Group >
/Tabs /S
/StructParents 62
>>
endobj
69 0 obj
>
/ExtGState >
/ProcSet [/PDF /Text /ImageB /ImageC /ImageI]
>>
/MediaBox [0 0 595.32 841.92]
/Contents 168 0 R
/Group >
/Tabs /S
/StructParents 63
>>
endobj
70 0 obj
>
/ExtGState >
/ProcSet [/PDF /Text /ImageB /ImageC /ImageI]
>>
/MediaBox [0 0 595.32 841.92]
/Contents 169 0 R
/Group >
/Tabs /S
/StructParents 64
>>
endobj
71 0 obj
>
/ExtGState >
/ProcSet [/PDF /Text /ImageB /ImageC /ImageI]
>>
/Annots [170 0 R 171 0 R 172 0 R 173 0 R 174 0 R 175 0 R 176 0 R 177 0 R 178 0 R]
/MediaBox [0 0 595. 32 841.92]
/Contents 179 0 R
/Group >
/Tabs /S
/StructParents 65
>>
endobj
72 0 obj
>
/ExtGState >
/XObject >
/ProcSet [/PDF /Text /ImageB /ImageC /ImageI]
>>
/MediaBox [0 0 595.32 841.92]
/Contents 186 0 R
/Group >
/Tabs /S
/StructParents 75
>>
endobj
73 0 obj
>
/ExtGState >
/XObject >
/ProcSet [/PDF /Text /ImageB /ImageC /ImageI]
>>
/MediaBox [0 0 595.32 841.92]
/Contents 193 0 R
/Group >
/Tabs /S
/StructParents 76
>>
endobj
74 0 obj
>
/ExtGState >
/XObject >
/ProcSet [/PDF /Text /ImageB /ImageC /ImageI]
>>
/MediaBox [0 0 595.32 841.92]
/Contents 200 0 R
/Group >
/Tabs /S
/StructParents 77
>>
endobj
75 0 obj
>
/ExtGState >
/XObject >
/ProcSet [/PDF /Text /ImageB /ImageC /ImageI]
>>
/MediaBox [0 0 595.32 841.92]
/Contents 203 0 R
/Group >
/Tabs /S
/StructParents 78
>>
endobj
76 0 obj
>
/ExtGState >
/ProcSet [/PDF /Text /ImageB /ImageC /ImageI]
>>
/MediaBox [0 0 595.32 841. 92]
/Contents 204 0 R
/Group >
/Tabs /S
/StructParents 79
>>
endobj
77 0 obj
>
/ExtGState >
/XObject >
/ProcSet [/PDF /Text /ImageB /ImageC /ImageI]
>>
/MediaBox [0 0 595.32 841.92]
/Contents 207 0 R
/Group >
/Tabs /S
/StructParents 80
>>
endobj
78 0 obj
>
endobj
79 0 obj
>
endobj
80 0 obj
>
endobj
81 0 obj
>
endobj
82 0 obj
>
endobj
83 0 obj
>
endobj
84 0 obj
>
endobj
85 0 obj
>
endobj
86 0 obj
>
endobj
87 0 obj
>
endobj
88 0 obj
>
stream
x

Phenolic compounds in plants: biogenesis and functions

L. M. Babenko ¹ , O. E. Smirnov ² , K. O. Romanenko ¹ ,
O. K. Trunova ³ , I. V. Kosakіvskа ¹

¹ М.Г. Холодного НАН Украины, Киев;
² Учебно-научный центр «Институт биологии и медицины», Киевский национальный университет имени Тараса Шевченко, Украина;
³ В. И. Вернадского Институт общей и неорганической химии, НАН Украины, г. Киев;
e-mail: [email protected]

Получено: 05 ноября 2018 г.; Принято: 14 марта 2019 г.

Фенольные соединения (ФС) в растениях играют важную роль в контроле роста и обладают антиоксидантными, структурными, аттрактантными, сигнальными и защитными функциями. Проанализированы и обобщены сведения об открытии, изучении и идентификации фенольных соединений в растениях, их роли в сложной системе вторичных метаболитов. Описаны функции ПК на макромолекулярном, клеточном, а также организменном и популяционном уровнях. Освещены пути образования ПК, ферменты, ответственные за их синтез, и пластичность синтеза в растительной клетке. Обсуждается участие ПК в дыхании растений, фотосинтезе, окислительно-восстановительных процессах и регуляции физиологического состояния растений.

Ключевые слова: биогенез, фенольные соединения, фенилаланин, фенилаланинаммиак-лиаза, физиологическая роль. Кузнецова СА. Роль фенольных соединений в растениях. Агрохимия. 2008 г.; 7: 86-96. (По-русски).

Запрометов М.Н. Фенольные соединения и их роль в жизни растения: 56 Тимирязевские чтения. М.: Наука, 1996. 45 р. (По-русски).

Хлесткина Е.К. Адаптивная роль флавоноидов: акцент на злаки. Зерновые рес. коммун. 2013;41(2):185-198. Перекрёстная ссылка

Запрометов М.Н., Николаева Т.Н. Хлоропласты, выделенные из листьев фасоли, способны к биосинтезу фенольных соединений. Русс Ж Завод Физиол. 2003;50(5):623-626. Перекрёстная ссылка

Золотарева О.К., Подорванов В.В., Дубина Д.В. Полифенольные соединения макрофитов и их экологическое значение. Укр Бот Ж. 2017; 74(4): 373–384. (на украинском языке). Перекрёстная ссылка

Баласундрам Н., Сундрам К., Самман С. Фенольные соединения в растениях и побочных продуктах агропромышленного производства: антиоксидантная активность, возникновение и потенциальное использование.

Пищевая хим. 2006 г.; 99(1): 191-203. Перекрёстная ссылка

Ковалева Л.В., Захарова Е.В., Минкина Ю.В. Ауксин и флавоноиды в прогамной фазе оплодотворения петунии. Russ J Plant Physiol. 2007;54(3):396-401. Перекрёстная ссылка

Ванхолм Р., Демедтс Б., Моррил К., Ральф Дж., Бурджан В. Биосинтез и структура лигнина. Физиол растений. 2010 июль; 153(3):895-905. PubMed, PubMedCentral, перекрестная ссылка

Амтор JS. Эффективность биосинтеза лигнина: количественный анализ. Энн Бот. 2003 Май; 91(6):673-95. PubMed, PubMedCentral, перекрестная ссылка

Крозье А., Джаганатх И.Б., Клиффорд М.Н. Фенолы, полифенолы и дубильные вещества: обзор / Вторичные метаболиты растений: появление, структура и роль в рационе человека; Крозье А., Клиффорд М., Ашихара Х. Ред. Блэквелл: Оксфорд, Великобритания, 2008: 1–24. Перекрёстная ссылка

Хартманн Т. От отходов к экохимикатам: пятьдесят лет исследований вторичного метаболизма растений.

Фитохимия. 2007 ноябрь-декабрь;68(22-24):2831-46. PubMed, перекрестная ссылка

Кукол Дж., Конн. Э.Э. Метаболизм ароматических соединений у высших растений. IV. Очистка и свойства фенилаланиндезаминазы Hordeum vulgare. J Биол. Хим. 1961 Октябрь; 236: 2692-8. ПабМед

Sachs, J. Handbuch der Experiment-Pysologie der pflanzen. Вильгельм Энгельманн, Лейпциг, Германия, 1865 г. 514 с.

Кнаггс АР. Биосинтез метаболитов шикимата. Nat Prod Rep. 2003 Feb;20(1):119-36. PubMed, перекрестная ссылка

Винкель-Ширли Б. Биосинтез флавоноидов и последствия стресса. Curr Opin Plant Biol. 2002 июнь;5(3):218-23. PubMed, перекрестная ссылка

Hahlbrock K, Scheel D. Физиология и молекулярная биология метаболизма фенилпропаноидов. Ann Rev Plant Physiol Plant Mol Biol. 1989;40(1):347–369. Перекрёстная ссылка

Блаунт Дж.В., Корт К.Л., Масуд С.А., Расмуссен С., Лэмб С., Диксон Р.А. Изменение экспрессии 4-гидроксилазы коричной кислоты в трансгенных растениях свидетельствует о наличии петли обратной связи в точке входа в фенилпропаноидный путь.

Завод Физиол . 2000 янв; 122(1):107-16. PubMed, PubMedCentral, перекрестная ссылка

Allwood EG, Davies DR, Gerrish C, Ellis BE, Bolwell GP. Фосфорилирование фенилаланин-аммиак-лиазы: свидетельство новой протеинкиназы и идентификация фосфорилированного остатка. ФЭБС Письмо. 1999 20 августа; 457(1):47-52. PubMed, перекрестная ссылка

Ченг С.Х., Шин Дж., Герриш С., Болуэлл Г.П. Молекулярная идентификация фенилаланин-аммиак-лиазы как субстрата специфической конститутивно активной CDPK Arabidopsis, экспрессируемой в протопластах кукурузы. ФЭБС Летт. 17 августа 2001 г.; 503 (2-3): 185-8. PubMed, перекрестная ссылка

Gälweiler L, Guan C, Müller A, Wisman E, Mendgen K, Yephremov A, Palme K. Регуляция транспорта полярного ауксина с помощью AtPIN1 в сосудистой ткани арабидопсиса. Наука. 18 декабря 1998 г .; 282 (5397): 2226-30. PubMed, перекрестная ссылка

Дай Дж., Мампер Р.Дж. Фенольные смолы растений: экстракция, анализ и их антиоксидантные и противораковые свойства.

молекул. 21 октября 2010 г.; 15 (10): 7313-52. PubMed, PubMedCentral, CrossRef

Гомес-Гарсия Мдель Р., Очоа-Алехо Н. Биохимия и молекулярная биология биосинтеза каротиноидов в перце чили (Capsicum spp.). Int J Mol Sci. 2013 16 сентября; 14 (9): 19025-53. PubMed, PubMedCentral, перекрестная ссылка

Палладин В. Das Blut der Pflanzen. Berichte der Deutschen Botanischen Gesellschaft. 1908; 26а: 125-132.

Раванель П., Тиссут М., Дус Р. Разобщающая активность халконов и дигидрохалконов на изолированных митохондриях из клубней картофеля и гипокотилей бобов мунг. Фитохимия. 1982;21(12):2845-2850. Перекрёстная ссылка

Чжао Х.Дж., Цзоу К. Защитное действие экзогенных антиоксидантов и фенольных соединений на фотосинтез листьев пшеницы в условиях высокой освещенности и окислительного стресса. Фотосинтетика. 2002; 40(4): 523-527. Перекрёстная ссылка

Ylstra B, Touraev A, Moreno RM, Stöger E, van Tunen AJ, Vicente O, Mol JN, Heberle-Bors E.

Флавонолы стимулируют развитие, прорастание и рост трубочек пыльцы табака. Завод физиол. 1992 Октябрь; 100 (2): 902-7. PubMed, PubMedCentral, перекрестная ссылка

ван дер Меер И.М., Стам М.Э., ван Тюнен А.Дж., Мол Дж.Н., Стуитье А.Р. Антисмысловое ингибирование биосинтеза флавоноидов в пыльниках петунии приводит к мужской стерильности. Растительная клетка. 1992 март; 4(3):253-62. PubMed, PubMedCentral, перекрестная ссылка

Mo Y, Нагель С., Тейлор Л.П. Биохимическая комплементация мутантов халконсинтазы определяет роль флавонолов в функциональной пыльце. Proc Natl Acad Sci USA. 1992 1 августа 89 г.(15):7213-7. PubMed, PubMedCentral, перекрестная ссылка

Pollak PE, Vogt T, Mo Y, Taylor LP. Накопление халконсинтазы и флавонолов в рыльцах и пыльниках петунии гибридной. Завод физиол. 1993 июль; 102 (3): 925-932. PubMed, PubMedCentral, перекрестная ссылка

Boerjan W, Ralph J, Baucher M. Биосинтез лигнина.

Annu Rev Растение Биол. 2003;54:519-46. PubMed, перекрестная ссылка

Риверо Р.М., Руис Дж.М., Гарсия П.С., Лопес-Лефебре Л.Р., Санчес Э., Ромеро Л. Устойчивость к холоду и тепловому стрессу: накопление фенольных соединений в растениях томатов и арбузов. Растениевод. 5 января 2001 г .; 160 (2): 315–321. PubMed, перекрестная ссылка

Крул А., Амарович Р., Вайднер С. Влияние холодового стресса на фенольные соединения и антиоксидантную способность листьев виноградной лозы (Vitis vinifera L.). J Завод Физиол. 15 сентября 2015 г .; 189: 97-104. PubMed, перекрестная ссылка

Амарович Р., Вайднер С., Войтович И., Кармач М., Косинска А., Рыбарчик А. Влияние низкотемпературного стресса на изменения состава фенольных соединений листьев винограда и их антиоксидантных свойств. Funct Plant Sci Biotechnol. 2010; 4: 90–96.

Вайднер С., Каролак М., Карамач М., Амарович Р. Фенольные соединения и свойства антиоксидантов в корнях виноградной лозы (Vitis vinifera) в условиях засушливого стресса с последующим восстановлением.

Acta Soc Bot Pol. 2009;78(2):97–103. Перекрёстная ссылка

Диксон Р.А., Ахнин Л., Кота П., Лю С.Дж., Редди М.С., Ван Л. Путь фенилпропаноида и защита растений — перспектива геномики. Мол Завод Патол. 2002 Сентябрь 1;3(5):371-90. PubMed, перекрестная ссылка

Свигонска С., Амарович Р., Крул А., Мостек А., Бадовец А., Вайднер С. Влияние абиотического стресса во время прорастания сои с последующим восстановлением на фенольные соединения корней и их антиоксидантную способность. Acta Soc Bot Pol. 2014; 83(3): 209–218. Перекрёстная ссылка

Рудиковская Е.Г., Федорова Г.А., Дударева Л.В., Макарова Л.Е., Рудоковский А.В. Влияние температуры роста на состав фенолов в корнях гороха. Русс Ж Завод Физиол. 2008;55(5): 712–715. Перекрёстная ссылка

Posmyk MM, Bailly C, Szafrańska K, Janas KM, Corbineau F. Антиоксидантные ферменты и изофлавоноиды в охлажденных проростках сои (Glycine max (L.) Merr.). J Завод Физиол. 2005 Апрель; 162 (4): 403-12. PubMed, перекрестная ссылка

Олениченко Н.А., Загоскина Н.В., Астахова Н.В., Трунова Т.И., Кузнецов Ю.В. Первичный и вторичный метаболизм озимой пшеницы при холодовом закаливании и обработке антиоксидантами. Appl Biochem Microbiol. 2008 сен-октябрь;44(5):589-94. (По-русски). PubMed, перекрестная ссылка

Shichijo C, Hamada T, Hiraoka M, Johnson CB, Hashimoto T. Усиление индуцированного красным светом синтеза антоцианов в первых междоузлиях сорго при умеренно низкой температуре в период культивирования до облучения. Планта . 1993 год; 191(2): 238–245. Перекрёстная ссылка

Christie PJ, Alfenito MR, Walbot V. Влияние низкотемпературного стресса на общие пути фенилпропаноида и антоцианина: увеличение количества транскриптов и антоциановой пигментации в проростках кукурузы. Планта. 1994;194(4):541–549. Перекрёстная ссылка

Гулд К.С., Листер К. Функции флавоноидов в растениях / Флавоноиды: химия, биохимия и применение.

ред. О.М. Андерсен, К.Р. Маркхэм. Тейлор и Фрэнсис Групп, ООО. 2006: 397-442. Перекрёстная ссылка

Павлючкова С.М., Спивак Е.А., Вершиловская И.В. Недвед Э.Л. Влияние экзогенной 5-аминолевулиновой кислоты на работу антиоксидантной системы растений картофеля (Solanum tuberosum) в условиях низкотемпературного стресса. Известия НАН Беларуси. биол сер. 2014; 3: 46-51. (По-русски).

Олениченко Н.А., Загоскина Н.В., Астахова Н.В., Трунова Т.И., Кузнецов Ю.В. Первичный и вторичный метаболизм озимой пшеницы при холодовом закаливании и обработке антиоксидантами. Appl Biochem Microbiol. 2008 г.; 44(5): 535-540. Перекрёстная ссылка

Абрамчик Л.М., Сердюченко Е.В., Макаров В.Н., Зеневич Л.А., Жаворонкова Н.Б., Кабашникова Л.Ф. Сортовые особенности реакции ярового гексаплоидного тритикале на температурный стресс. Известия НАН Беларуси. биол сер. 2014; 4: 43-49. (По-русски).

Кабашникова Л.Ф., Абрамчик Л.М., Сердюченко Е.

В., Капылова Л.В. Отмечено действие проростков ячменя (Hordeum vulgare) при сочетанном воздействии гипертермии и обезвоживания. Известия НАН Беларуси. биол сер. 2013; 3: 60–65. (По-русски).

Чалкер-Скотт Л. Экологическое значение антоцианов в реакциях растений на стресс. Фотохим Фотобиол. 1999; 70(1):1–9. Перекрёстная ссылка

Гулд К.С., Маркхэм К.Р., Смит Р.Х., Горис Дж.Дж. Функциональная роль антоцианов в листьях Quintinia serrata A. Cunn. J Опытный бот. 2000 июнь;51(347):1107-15. PubMed, перекрестная ссылка

Harvaux M, Kloppstech K. Защитные функции каротиноидных и флавоноидных пигментов от избыточного видимого излучения при температуре охлаждения исследованы на мутантах Arabidopsis npq и tt . Планта. 2001 Октябрь; 213 (6): 953-66. PubMed, перекрестная ссылка

Колупаев Ю.Е., Ястреб Т.О., Обозный А.И., Рябчун Н.И., Кириченко В.В. Конститутивная и холодовая устойчивость проростков ржи и пшеницы к окислительному стрессу.

Russ J Plant Physiol. 2016;63(3):326–337. Перекрёстная ссылка

Лахман Ю., Дуджак Ю., Михолова Д., Колиховас Д., Пивец В. Влияние кадмия на содержание флавоноидов в молодых растениях ячменя ( Hordeum sativum L.). Почвенная среда растений. 2005 г.; 51(11): 513–516. Перекрёстная ссылка

Schmidt S, Zietz M, Schreiner M, Rohn S, Kroh LW, Krumbein A. Влияние генотипа и климата на концентрацию и состав флавоноидов в капусте ( Brassica oleracea var. сабеллика ). Пищевая химия . 2010 г.; 119(4): 1293–1299. Перекрёстная ссылка

Треуттер Д. Значение флавоноидов в устойчивости растений: обзор. Environ Chem Lett. 2006 г.; 4(3): 147–157. Перекрёстная ссылка

Бабенко Л.М., Водка М.В., Акимов Ю.Н., Смирнов А.Е., Бабенко А.В., Косаковская И.И. Особенности ультраструктуры и биохимического состава клеток мезофилла листа Triticum spel ta L. в начальный период температурного стрессового воздействия.

Биол. клеточных тканей. 2019; 13(1): 70-78. Перекрёстная ссылка

Колупаев Ю.Е., Гориелова Е.И., Ястреб Т.О., Попов Ю.В., Рябчун Н.И. Фенилаланин-аммиак-лиазная активность и содержание флавоноидных соединений в проростках пшеницы при действии гипотермии и донора сероводорода. Укр Биохим Ж. 2018; 90(6): 12-20. Перекрёстная ссылка

Гекторс К., Ван Увелен С., Гизез Ю., Принсен Э., Янсен М.А. Фитогормон ауксин является компонентом регуляторной системы, которая контролирует УФ-опосредованное накопление флавоноидов и УФ-индуцированный морфогенез. Завод Физиол. август 2012 г.; 145(4):594-603. PubMed, перекрестная ссылка

Мерфи ТМ, Гамильтон СМ. Штамм Rosa damascena культивирует клетки, устойчивые к ультрафиолетовому излучению. Завод физиол. 1979 Декабрь; 64 (6): 936-41. PubMed, PubMedCentral, перекрестная ссылка

Кондо Н., Кавасима М. Повышение устойчивости к окислительному стрессу проростков огурца ( Cucumis sativus L.

) при облучении УФ-В: возможное участие фенольных соединений и антиоксидантных ферментов. J Раст. рез. 2000;113(3):311–317. Перекрёстная ссылка

Оу С., Лу С., Ян С. Влияние усиленного УФ-В излучения на содержание флавоноидов в клетках мезофилла пшеницы. Разрешение излучения изображения. 2018; 1(1): 1–9. Перекрёстная ссылка

Блохина О., Виролайнен Э., Фагерштедт К.В. Антиоксиданты, окислительное повреждение и стресс от кислородного голодания: обзор. Энн Бот . 2003 г., январь 91 г. Спецификация №: 179-94.
PubMed, PubMedCentral, перекрестная ссылка

Радюкина Н.Л., Тоайма В.И.М., Зарипова Н.Р. Участие низкомолекулярных антиоксидантов в перекрестной адаптации лекарственных растений к последовательному действию УФ-В-излучения и засоления. Russ J Plant Physiol. 2012; 59(1): 71–78. Перекрёстная ссылка

Пуньясири П.А., Абейсингхе С.Б., Кумар В. Предварительно сформированная и индуцированная химическая устойчивость чайного листа к инфекции Exobasidium vexans .

J Хим. экол. 2005 июнь; 31 (6): 1315-24. PubMed, перекрестная ссылка

Яо К., Де Лука В., Бриссон Н. Создание метаболического стока для триптофана изменяет фенилпропаноидный путь и восприимчивость картофеля к Phytophthora infestans. Растительная клетка . 1995 ноябрь;7(11):1787-1799. PubMed, PubMedCentral, CrossRef

Бекман CH. Клетки, накапливающие фенол: ключи к запрограммированной гибели клеток и формированию перидермы при устойчивости к увяданию и общим защитным реакциям растений? Physiol Mol Растительный патол. 2000;57(3):101-110. Перекрёстная ссылка

Лозовая В.В., Лыгин А.В., Зернова О.В., Ли С., Хартман Г.Л., Видхольм Дж.М. Накопление изофлавоноидов в волосатых корнях сои при обработке Fusarium solani. Завод Физиол Биохим. 2004 июль-август;42(7-8):671-9. PubMed, перекрестная ссылка

Дмитриев А.П. Фитоалексины и их роль в устойчивости растений. НАН Украины, Институт клеточной биологии и генной инженерии.

Киев: Наукова думка, 1999. 207 с. (По-русски).

Гао Ю.Н., Лю Б.Ю., Сюй Д., Чжоу К.Х., Ху К.И., Гэ Ф.Дж., Чжан Л.П., Ву З.Б. Фенольные соединения, выделяемые из двух погруженных в воду пресноводных макрофитов, и их аллелопатическое действие на Microcystis aeruginosa. Pol J Environ Stud. 2011;20(5):1153-1159.

Волынец АП. Фенольные соединения в жизни растений. Минск: Беларусь. Навука, 2013. 285 с. (По-русски).

Мацумура Э., Мацуда М. Сато Ф., Минами Х. Микробное производство растительных бензилизохинолиновых алкалоидов / Натуральные продукты: фитохимия, ботаника и метаболизм алкалоидов, фенолов и терпенов. Рамават К., Мериллон Дж.М. (Ред.). Springer, Берлин, Гейдельберг, 2013: 3-24. Перекрёстная ссылка

Купер-Драйвер Г.А., Бхаттачарья М. Роль фенолов в эволюции растений. Фитохимия. 1998;49(5):1165-1174.

Харборн JB, Уильямс, Калифорния. Успехи в исследованиях флавоноидов с 19 лет92. Фитохимия. 2000 ноябрь;55(6):481-504.

PubMed, перекрестная ссылка

Волленвебер Э., Стивенс Дж. Ф., Дёрр М., Розефельдс А. С. Таксономическое значение вариаций флавоноидов у умеренных видов Nothofagus . Фитохимия. 2003 Апрель; 62 (7): 1125-31. PubMed, перекрестная ссылка

Erhard D, Gross E. Влияют ли факторы окружающей среды на состав потенциальных аллелохимических веществ в подводном пресноводном макрофите Elodea nuttallii (Hydrocharitaceae)? Верх Интернат Верейн Лимнол. 2005;29(1):287–291. Перекрёстная ссылка

Гросс Э.М., Фельдбаум К., Граф А. Биомасса эпифитов и элементный состав подводных макрофитов в мелководных эвтрофных озерах. Гидробиология. 2003;506(1–3):559–565. Перекрёстная ссылка

Шонерс С., Бальцерович Д., Брин Г., Хилл К., Зданио М., Муйе Г., Холман Т.Дж., О Дж., Уилсон М.Х., Никонорова Н., Ву Л.Д., Де Смет И., Сваруп Р., Де Вос В.Х., Пинтелон И., Адриансен Д. , Grierson C, Bennett MJ, Vissenberg K. Регулируемая ауксином киназа CrRLK1L ERULUS контролирует состав клеточной стенки во время роста кончиков корневых волосков.

Карр Биол. 2018 5 марта; 28(5):722-732.e6. PubMed, перекрестная ссылка

Браун Д.Э., Рашотте А.М., Мерфи А.С., Норманли Дж., Таг Б.В., Пир В.А., Тайз Л., Мудей Г.К. Флавоноиды действуют как отрицательные регуляторы транспорта ауксина in vivo у арабидопсиса. Завод физиол. 2001 июнь; 126(2):524-35. PubMed, PubMedCentral, cr id=»https://doi.org/10.1104/pp.126.2.524″]

Пир В.А., Мерфи А.С. Флавоноиды и транспорт ауксинов: модуляторы или регуляторы? Trends Plant Sci. 2007 Декабрь; 12 (12): 556-63. PubMed, перекрестная ссылка

Santelia D, Henrichs S, Vincenzetti V, Sauer M, Bigler L, Klein M, Bailly A, Lee Y, Friml J, Geisler M, Martinoia E. Флавоноиды перенаправляют PIN-опосредованные потоки полярных ауксинов во время корневой гравитропной реакции. J Биол. Хим. 7 ноября 2008 г.; 283(45):31218-26. PubMed, PubMedCentral, перекрестная ссылка

Ng JL, Hassan S, Truong TT, Hocart CH, Laffont C, Frugier F, Mathesius U.

Флавоноиды и ингибиторы транспорта ауксина восстанавливают симбиотические клубеньки у Medicago truncatula мутанта рецепции цитокинина кре1 . Растительная клетка. 2015 авг; 27(8):2210-26. PubMed, PubMedCentral, перекрестная ссылка

Besseau S, Hoffmann L, Geoffroy P, Lapierre C, Pollet B, Legrand M. Накопление флавоноидов в арабидопсисе, подавленное синтезом лигнина, влияет на транспорт ауксина и рост растений. Растительная клетка. 2007 Январь; 19 (1): 148-62. PubMed, PubMedCentral, перекрестная ссылка

Ян Т, Чен Ю, Ван Х-Х, Дай Си Си. Симбионты растений: ключи к фитосфере. Симбиоз. 2013; 59(1): 1-14. Перекрёстная ссылка

Уиппс Дж.М. Микробные взаимодействия и биоконтроль в ризосфере. J Бот-опыт. 2001 март; 52 (специальный выпуск): 487-511. PubMed, перекрестная ссылка

Bais HP, Park SW, Weir TL, Callaway RM, Vivanco JM. Как растения общаются с помощью подземной информационной супермагистрали.

Trends Plant Sci. 2004 Январь; 9 (1): 26-32. PubMed, перекрестная ссылка

Дакора Ф.Д., Филлипс Д.А. Корневые экссудаты как медиаторы усвоения минералов в среде с низким содержанием питательных веществ. Почва для растений . 2002 г.; 245(1): 35–47. Перекрёстная ссылка

Бхаттачарья А., Суд П., Читовский В. Роль растительных фенолов в защите и коммуникации во время инфекции Agrobacterium и Rhizobium . Мол Завод Патол. 2010 Сентябрь; 11 (5): 705-19. PubMed, перекрестная ссылка

Хартли Р.Д., Харрис П.Дж. Фенольные составляющие клеточных стенок двудольных растений. Биохим Сист Экол. 1981;9(2-3):189-203. Перекрёстная ссылка

Блюм У., Стаман К.Л., Флинт Л.Дж., Стивен Р. Индукция и/или отбор фенольной кислоты с использованием почвенных и ризосферных бактерий и их влияние на фитотоксичность фенольной кислоты. J Хим. Экол. 2000;26(9):2059–2078. Перекрёстная ссылка

Hättenschwiler S, Vitousek PM.

Роль полифенолов в круговороте питательных веществ в наземных экосистемах. Тенденции Ecol Evol. 2000 июнь;15(6):238-243. PubMed, перекрестная ссылка

Taylor LP, Grotewold E. Флавоноиды как регуляторы развития. Curr Opin Plant Biol. 2005 июнь;8(3):317-23. PubMed, перекрестная ссылка

Хассан С., Матезиус У. Роль флавоноидов в передаче сигналов корня-ризосферы: возможности и проблемы для улучшения взаимодействия растений и микробов. J Опытный бот. 2012 Май; 63(9):3429-44. PubMed, перекрестная ссылка

Халворсон Дж.Дж., Гонсалес Дж.М., Хагерман А.Е., Смит Дж.Л. Сорбция танина и родственных фенольных соединений и влияние на растворимый азот в почве. Почвенный биол биохим. 2009 г.; 41(9):2002–2010. Перекрёстная ссылка

Кефели В.И., Калевич М.В., Борсари Б. Фенольный цикл в растениях и окружающей среде. J Cell Mol Biol. 2003;2(1):13–18.

Мандал С.М., Чакраборти Д., Дей С. Фенольные кислоты действуют как сигнальные молекулы в симбиозах растений и микробов.

Поведение сигнала установки. 2010 Апрель;5(4):359-68.
PubMed, PubMedCentral, перекрестная ссылка

Mierziak J, Kostyn K, Kulma A. Флавоноиды как важные молекулы взаимодействия растений с окружающей средой. молекул. 2014 10 октября; 19 (10): 16240-65.
PubMed, PubMedCentral, перекрестная ссылка

Staman K, Blum U, Louws F, Robertson D. Может ли одновременное ингибирование роста проростков и стимуляция популяций ризосферных бактерий свидетельствовать о переносе фитотоксинов из растительных остатков в основной массе почвы в ризосферу чувствительных видов? J Хим. Экол. 2001 Апрель; 27 (4): 807-29. PubMed, перекрестная ссылка

Хартвиг Ю.А., Джозеф К.М., Филлипс Д.А. Флавоноиды, выделяемые естественным образом из семян люцерны, повышают скорость роста Rhizobium meliloti . Завод физиол. 1991 март; 95(3):797-803. PubMed, PubMedCentral, перекрестная ссылка

Kobayashi H, Naciri-Graven Y, Broughton WJ, Perret X.

Флавоноиды вызывают временные сдвиги в экспрессии генов локусов, контролируемых nod-box, в Rhizobium sp. НГР234. мол микробиол. 2004 Январь; 51(2):335-47. PubMed, перекрестная ссылка

Janczarek M, Rachwał K, Marzec A, Grządziel J, Palusinska-Szysz M. Сигнальные молекулы и компоненты клеточной поверхности, участвующие в ранних стадиях взаимодействия между бобовыми и ризобиями. Прил. почва, экол. 2014; 85: 94–113. Перекрёстная ссылка

Fox JE, Starcevic M, Kow KY, Burow ME, McLachlan JA. Фиксация азота. Эндокринные разрушители и передача сигналов флавоноидов. Природа. 13 сентября 2001 г.; 413 (6852): 128-9. PubMed, перекрестная ссылка

Steinkellner S, Lendzemo V, Langer I, Schweiger P, Khaosaad T, Toussaint JP, Vierheilig H. Флавоноиды и стриголактоны в корневых экссудатах как сигналы в симбиотических и патогенных взаимодействиях растений и грибов. молекул. 5 июля 2007 г .; 12 (7): 1290-306. PubMed, PubMedCentral, перекрестная ссылка

Понсе М.

А., Шервино Дж.М., Эрра-Балселлс Р., Окампо Дж.А., Годеас А.М. Флавоноиды из побегов и корней Trifolium repens (клевер белый), выращенных в присутствии или в отсутствие арбускулярного микоризного гриба Glomus intraradices . Фитохимия. 2004 июль; 65 (13): 1925-30. PubMed, перекрестная ссылка

Акияма К., Мацуока Х., Хаяси Х. Выделение и идентификация C-гликозилфлавоноида, вызванного дефицитом фосфатов, который стимулирует образование арбускулярной микоризы в корнях дыни. Mol Plant Microbe Interact. 2002;15(4):334–340. Перекрёстная ссылка

Schliemann W, Ammer C, Strack D. Метаболитное профилирование микоризных корней Medicago truncatula . Фитохимия. январь 2008 г.; 69(1):112-46. PubMed, перекрестная ссылка

Харрисон М.Дж., Диксон Р.А. Накопление изофлавоноидов и экспрессия транскриптов защитных генов во время образования ассоциаций везикулярной арбускулярной микоризы в корнях Medicago truncatula .

Mol Plant Microbe Interact. 1993; 6(5): 643–654. Перекрёстная ссылка

Харрисон М.Дж., Диксон Р.А. Пространственные паттерны экспрессии генов флавоноидного/изофлавоноидного пути при взаимодействии между корнями Medicago truncatula и микоризный гриб Glomus versiforme . Завод Ж. 1994; 6(1): 9–20. Перекрёстная ссылка

Lagrange H, Jay-Allemand C, Lapeyrie F. Rutin, фенолгликозид из корневого экссудата эвкалипта, стимулирует рост гиф Pisolithus в пикомолярных концентрациях. Новый Фитол. 2001; 149(2): 349–355. Перекрёстная ссылка

Шервино Дж. М., Понсе М. А., Эрра-Басселлс Р., Вирхейлиг Х., Окампо Дж. А., Годеас А. Арбускулярная микоризная колонизация томатов Gigaspora и видов Ш в присутствии корневых флавоноидов. J Завод Физиол. 2005 г., июнь; 162(6):625-33. PubMed, перекрестная ссылка

Хакобо-Веласкес Д.А., Сиснерос-Севаллос Л. Последние достижения в области растительных фенолов.

молекул. 2017;22(8):1249. Перекрёстная ссылка

Cartea ME, Francisco M, Soengas P, Velasco P. Фенольные соединения в овощах семейства крестоцветных. молекул. 2011 г.; 16(1): 251–280. Перекрёстная ссылка

Mahlep (Prunus mahaleb L.) Yeşil Uç Çeliklerinin Köklenmesi Üzerine Farklı Hormon ve Nispi Nem Uygulamalarının Etkisi

Bu çalışmada, Konya ili alaaddin keykubat kampus alanında yetişen bir mahlep (prunus mahaleb l.) tipinden erken haziran (3 haziran) tarihinde, yıllık sürgünlerinden alınarak hazirane, yıllık sürgünlerinden alınarak hazirane, yıllık sürgünlerinden alınarak hazirlan Hava nispi nem ortamı, Indol-3-Butirik Asit’in (IBA) uygulanan 5 farklı konsantrasyonu (0, 500, 1500, 2500 ppm и 3500 ppm) ve perlit (0,0-5,0 mm) köklendirme ortamında köklendirmeye tabi tutulmuştur. Araştırmada, dikilen mahlep çeliklerinin tümünün canlı kaldığı ve yüksek oranda köklendiği belirlenmiştir. Çeliklerde kalluslanma en yüksek, % 95-100 nem seviyesindeki kontrol grubundan (% 41,50) elde edilmiştir. Köklenme oranı% 95-100 nem seviyesinde, 2500 ppm ve 3500 ppm дозировка (% 100) старший edilmiştir. Çeliklerde köklenme yüzey uzunluğu, en fazla % 95-100 nem seviyesinde 3500 ppm doz uygulamasında (4,196 см) belirlenmiştir. Kök sayısı bakımından, en yüksek değer % 95-100 nem seviyesindeki 3500 ppm доза uygulamasından (27,667 adet/çelik) elde edilmiştir. En uzun kök yine % 95-100 nem seviyesinde, 3500 ppm доза uygulamasından (5,958 см), en kısa kök ise% 95-100 nem seviyesinde, 2500 ppm doz uygulamasından (0,204 см) elde edilmiştir. Çeliklerde kök dallanması, yine en yüksek % 85-90 nem seviyesinde 3500 ppm doz uygulamasında (2,958 adet/çelik) belirlenmiştir. Mahlep yeşil çelik köklendirmesinde % 95-100 nem seviyesi, % 85-90 nem seviyesine göre daha yüksek değerler göstermiştir.

Анахтар Келимелер:

В этом исследовании верхние черенки хвойных пород были взяты из одного вида махалеб (Prunus mahaleb L.), выращенного в кампусе Алаэддин Кейкубат в Конье в начале июня. Черенки хвойных пород махалеба укореняли в среде с пемзой (0,0-5,0 мм) в системе туманообразования после обработки 0 (контроль), 500, 1500, 2500 ppm и 3500 ppm индол-3-масляной кислоты (IBA) при 2 различных условиях влажности. 85-90 % и 95-100 %. В исследованиях все черенки оживали и укоренялись с высоким коэффициентом. Самый высокий коэффициент режущего каллусообразования отмечен в контрольной группе (41,50 %) при уровне влажности 95-100 %. Наивысшая укореняемость в контроле, дозах гормона 2500 ppm и 3500 ppm составила 100 % при относительной влажности 95-100 %. Наибольшая длина участка укоренения была обнаружена при дозе гормона 3500 ppm (4,196 см) при относительной влажности 95-100 %. Что касается числа корней, самое высокое число было обнаружено при применении уровня гормона 3500 частей на миллион (27,667 числа / срез) в % 9Уровень влажности 5-100. Самый длинный корень был обнаружен у контрольной группы (5,958 см) при влажности 95-100 %, самый короткий – при дозе 2500 ppm ИМК (0,323 см) при влажности 95-100 %. Наибольшее ветвление корней было обнаружено при дозе гормона 3500 ppm (2,958 количества/чесок) при уровне влажности 95-100 %. Уровень влажности 95-100 % оказался лучше, чем уровень влажности 85-95 % для укоренения хвойных черенков махалеба.

Ключевые слова:

___

Альтман А., 1972. Роль ауксина в закладке корней у черенков. Proc Inter Plant Prop Soc 22: 284–294.
Альтман, А. и Уэринг, П.Ф., 1975. Влияние ИУК на накопление сахара и базипетальный транспорт меченных 14С ассимилятов в связи с образованием корней у черенков Phaseolus vulgaris. Физиол Растение 33:32–38.
Айдын, К., Огют Х. и Конак М., 2002. Некоторые физические свойства турецкого махалеба. Биосист. англ. 2002 г.; 82: 231–234.
Бакши, М., Бансал, С. и Хусен, А., 2005. Укоренение узловых черенков хвойных пород Dalbergia sissoo Roxb. (Шишам) под влиянием высоты пня и положения черенков на побегах. Ind J For 28: 307–315.
Бакши, М. и Хусен, А., 2002. Чистый фотосинтез в листовых узловых черенках эвкалипта гибридного при прерывистом тумане под влиянием применения ауксина. Инд. Для 128: 65–69.
Bhattacharya, NC, 1988. Активность ферментов во время придаточных корней. В: Davis TD, Haissig BE, Sankhla N (eds) Образование придаточных корней у черенков, Dioscorides Press, Portland, стр. 88–101.
Casson, S.A. and Lindsey, K., 2003. Гены и передача сигналов в развитии корней. Новый фитол 158:11–38.
Дэвис, Т. Д. и Поттер, Дж. Р., 1981. Текущий фотосинтез как ограничивающий фактор образования придаточных корней на черенках листового гороха. J Am Soc Hortic Sci 106: 278–282.
Дик, Дж. М. и Лики, Р. Р. Б., 2006. Дифференциация динамических переменных, влияющих на укореняемость молодых и взрослых черенков вишни (Prunus avium). Журнал садоводческой науки и биотехнологии, 81(2): 296-302.
Дмитриенко Н.Г., Ковалева А.Ф., Маслова В.А., Сенин В.И., 1984. Влияние минерализованной воды на укоренение хвойных черенков. Садоводство. №: 8, 18-19.
Дюзгюнеш, О., Кешичи, Т., Кавунку, О. ве Гюрбюз, Ф., 1987. Араштырма и Денеме Метотлары. Анкара Юнив. Зират Фак. Yayınları: 1021, Ders Kitabı: 295, Анкара.
Güneş¸ T., 2000. Активность пероксидазы и ИУК-оксидазы при укоренении черенков трех видов тополя. Терк Дж. Бот 24: 97–101.
Haines, P.I., Wong, C.Y. и Chia, E., 1992. Перспективы получения фенотипов высшего селекционного возраста Acacia mangium и A. auriculiformis. В кн.: Технологии разведения тропических акаций. Труды ACIAR, № 37, стр. 11–118.
Haissig, B.E., 1984. Накопление и распределение углеводов в проростках и черенках Pinus Banksiana. Физиол Растение 61:13–19.
Haissig, B.E., 1986. Метаболический процесс при адвентивном укоренении черенков. В: Джексон М.Б. (ред.) Образование новых корней у растений и черенков. Паб Martinus Nijhoff, Дордрехт, стр. 141–189.
Хейсиг, Б.Е. и Дэвис, Т.Д., 1994. Историческая оценка исследований придаточных корней до 1993 г. В: Дэвис Т.Д., Хейсиг Б.Е. (ред.) Биология образования придаточных корней. Plenum Press, Нью-Йорк и Лондон, стр. 275–331.
Хартманн, Х.Т., Кестер, Д.Е., Дэвис, Ф.Т. и Женева, Р.Л., 1997. Принципы и практика размножения растений. 6-е изд. Prentice-Hall of India Private Limited, Нью-Дели, стр. 276–328.
Husen, A. и Pal, M., 2000. Аналитические исследования взаимодействия эффектов в зависимости от положения, времени года и ауксина на образование придаточных корней в стеблевых черенках зрелого тика (Tectona grandis Linn. f.). Энн Форест 8: 253–261.
Хусен, А. и Пал, М., 2001a. Взаимодействие ауксина и этиоляции на образование придаточных корней у черенков Tectona grandis Linn. ф. Инд. Для 127: 526–532.
Хузен, А. и Пал, М., 2001b. Клональное размножение Tectona grandis (Linn. f.): влияние IBA и площади листьев на снос углеводов и регенерацию придаточных корней на черенках ветвей. Энн Форест 9: 88–95.
Хузен, А. и Пал, М., 2003a. Влияние серийной прививки почками и этиоляции на омоложение и укоренение черенков взрослых деревьев Tectona grandis Linn. ф. Сильве Жене 52:84–87.
Husen, A., 2004. Клональное размножение Dalbergia sissoo Roxb. узловыми черенками хвойных пород: влияние генотипов, применение ИМК и положение черенков на побегах. Сильве Жене 53: 50–55.
Хусен, А. и Пал, М., 2007a. Метаболические изменения при развитии зачатка придаточных корней у Tectona grandis Linn. ф. (тик) черенки в зависимости от возраста растений-доноров и обработки ауксином (IBA и NAA). Нью-Форест 33: 309–323.
Хузен, А. и Пал, М., 2007c. Влияние положения ветвей и обработки ауксином на клональное размножение Tectona grandis Linn. ф. Нью-Форест 34: 223–233.
Ivanicka, J. and Cvopa, J., 1977. Размножение кизила (Cornus mas L.) черенками хвойных и полутвердых пород. Gatenbauwissenschaft, 42(4): 169-171.
Ivanicka, J., 1988. Размножение необычных плодовых культур черенками хвойных пород под туманом. Vedecke Prace Выскумнего Уставу Овоцич и Окраснич Древин в Бойничях. 7, 163-170; 14.
Калёнку, И. H., ve Ecevit, FM, 1995. Farklı nem seviyelerinin kızılcık (Cornus mas L.) yeşil çeliklerinde köklenme üzerine etkileri. Türkiye II Ulusal Bahçe Bitkileri Kongresi (3-6 Ekim 1995), Cit I (Meyve), s 273-276. Чукурова Юнив. Зират Фак. Балчалы-Адана.
Калёнку, И. Х., 19 лет96. Konya Yöresindeki Kızılcık (Cornus mas L.) Tiplerinin Bazı Özellikleri ve Farklı Nem Ortamlarındaki Köklenme Durumu Üzerine Bir Araştırma, Selçuk Üniv. Tarımsal Yapılar ve Sulama Anabilim Dalı, Doktora Tezi (Basılmamış), Конья.
Калёнку, И. H. ve Özer, E., 2000. Gilaburu’nun (Viburnum opulus L.) yeşil yan çeliklerle köklendirilmesi ve fidan elde edilmesi. II. Улусал Фиданджылык Семпозьюму (25-29 Эйлюл 2000 г.). 1.1-10, Бадемли-Одемиш, Измир.
Калёнку, И. Х., Бабаоглу, Д. ве Йылмаз, М., 2007. Гилабурунун (Калина обыкновенная L.) yeşil uç çeliklerinde çelik köklenmesi üzerine bazı hormonların etkileri. Türkiye V. Ulusal Bahçe Bitkileri Kongresi, Cilt 1: Meyvecilik, (04-07 Eylül 2007), Эрзурум.
Liu, Z.H., Hsiao, I.C. и Pan, Y.W., 1996. Влияние нафталинуксусной кислоты на эндогенную индол-3-уксусную кислоту, пероксидазу и ауксиноксидазу в гипокотильных черенках сои во время корнеобразования. Бот Булл Акад Син 37: 247–253.
Liu, Z.H., Wang, W.C. и Yen, Y.S., 1998. Влияние гормональной обработки на корнеобразование и уровни эндогенной индол-3-уксусной кислоты и полиамина Glycine max, культивируемого in vitro. Бот Булл Акад Син 39: 113–118.
Людвиг-Мюллер, Дж., Верточник, А. и Таун, К.Д., 2005. Анализ образования придаточных корней, вызванных индол-3-масляной кислотой, на сегментах стебля арабидопсиса. J Эксперт Бот 56:2095–2105.
Морено, М. А., Монтанес, Л., Табуэнка, М. К. и Камбра, Р., 1996. Характеристики адары как подвоя вишни. науч. Хортик. 1996 год; 65: 85–91.
Нанда, К.К., Бхаттачарья, Н.К., Мурти, К.Г. и Каур, Н.П., 1972. Исследования изопероксидаз и их связи с укоренением стебля и черенков гипокотилей Populous Nigra и Phaseolus mango. В: Мохан Рам Х.И. (редактор) Symp Cur Trends Plant Sci, Делийский университет, Нью-Дели, 3–10 октября, стр. 28–30.
Озбек С; Ожан М. ве Йылмаз М., 19 лет61. Чай çeliklerinin köklenmesi üzerine muhtelif hormonların tesiri. Ankara Üniversitesi Ziraat Fakültesi Yıllığı Yıl:11, Fasikül 2.
Özer, E. ve Kalyoncu, İ. H., 2007. Гилабуру (Viburnum opulus L.)’nun jeşil çelikle çoğaltma imkanlarının araştırılması. Сельчук Юнив. Зират Фак. Дергиси 21(43): 46-52. Конья.
Озгювен, А.И. ве Ак, Б.Е., 1993. Индол Бутирик Асидин (IBA) nar çeliklerinin köklenmesi üzerine etkisi. Ç. О. Зираат Факюльтеси Дергиси, 8, (3):1-10. Адана.
Пал М., 1995. Укоренение стеблевых черенков древесных растений. В: Бава Р., Хосла П.К., Кохли Р.К. (ред.) Улучшение лесного хозяйства. Бишен Сингх Махендра Пал Сингх, Дехра Дун, стр. 37–58.
Ратер, Г. Х., Баба и А. М., Бандай, Ф. А., 2005 г. Размножение подвоя вишни черенками мягкой древесины в камере с нулевой энергией. Садоводческий журнал Том: 18 Выпуск: 2 Страницы: 75-79 Опубликовано: 2005.
Rout, G.R., 2006. Влияние ауксинов на развитие придаточных корней из одноузловых черенков Camellia sinensis (L.) Kuntze и связанные с ними биохимические изменения. Правила выращивания растений 48:111–117.
Сезик, Э. и Басаран, А., 1985. Фитохимические исследования растений, используемых в народной медицине и травяном чае в Турции: II. Эфирное масло Stachys lavandulifolia Vahl. Журнал фармацевтического факультета Университета Анкары 21 (1985), стр. 98–107.
Смарт, Д. Р., Кочиш, Л., Уокер, М. А. и Стокерт, К., 2003. Спящие почки и образование придаточных корней Vitis и другими древесными растениями. J Plant Grow Regul 21: 296–314.
Шривастава Л.М., 2002. Рост и развитие растений: гормоны и окружающая среда. Reed Elsevier India Private Limited, Нью-Дели, Индия, стр. 341–375.
Suriyapananont, V., 1990. Обрезка стебля японского абрикоса в связи с регуляторами роста, средой для укоренения и сезонными изменениями. Acta Horti., №: 274, 475-480; 9.
Zalesny, R.S., Jr, Riemenscheider, D.E. and Hall, R.B., 2005. Раннее укоренение спящих черенков лиственных пород Populus: анализ количественных взаимодействий генетики и генотипа с окружающей средой. Can J For Res 35: 918–929.
Чжан, KC; Чжан С. М. и Ян. Г. Х., 2004. Опыт размножения подвоя черешни мягким черенкованием. Китайские фрукты, №3, Страницы: 56-57.
Зора, С., Сандху, А.С. и Диллон, Б.С., 1986. Использование и укоренение стеблевых черенков персика (Prunus persica Batsch) cv. Шарбати в ответ на индолмасляную кислоту и циклофосфамид. Достижения в исследованиях фруктов умеренного климата. Материалы Национального симпозиума по температурным фруктам, 15–18 марта, Сельскохозяйственный университет штата Химачал-Прадеш, Солан, Индия. 141-146;12.

___

Бибтекс	@ {sduzfd317598, журнал = {Ziraat Fakültesi Dergisi}, иссн = {1304-9984}, эйссн = {2687-3419}, address = {Сулейман Демирель Юниверситеси Зираат Факюльтеси Чюнюр Испарта}, издатель = {Isparta Uygulamalı Bilimler Üniversitesi}, год = {2008}, громкость = {3}, число = {1}, страницы = {32 — 41}, title = {Mahlep (Prunus mahaleb L.) Yeşil Uç Çeliklerinin Köklenmesi Üzerine Farklı Hormon ve Nispi Nem Uygulamalarının Etkisi}, ключ = {цитировать}, автор = {Кальёнку, Исмаил Хакки и Эрсой, Нильда и Айдын, Метин} }
A.. (Publication Year). Article title. Periodical Title, Volume(Issue), pp.-pp. doi:XX.XXXXX or journal URL»> АПА	Калёнку, И. ЧАС. , Эрсой, Н. и Айдын, М. (2008). Mahlep (Prunus mahaleb L.) Yeşil Uç Çeliklerinin Köklenmesi Üzerine Farklı Hormon ve Nispi Nem Uygulamalarının Etkisi . Зираат Факюльтеси Дергиси , 3 (1) , 32-41 .
ГНД	Калёнку, И. ЧАС. , Эрсой, Н. , Айдын, М. «Махлеп (Prunus mahaleb L.) Yeşil Uç Çeliklerinin Köklenmesi Üzerine Farklı Hormon ve Nispi Nem Uygulamalarının Etkisi» . Зираат Факюльтеси Дергиси 3 (2008 г.) ): 32-41
Чикаго	Калёнку, И. ЧАС. , Эрсой, Н. , Айдын, М. «Махлеп (Prunus mahaleb L.) Yeşil Uç Çeliklerinin Köklenmesi Üzerine Farklı Hormon ve Nispi Nem Uygulamalarının Etkisi». Зираат Факюльтеси Дергиси 3 (2008 г.) ): 32-41
РИС	ТЫ — ДЖУР T1 — Mahlep (Prunus mahaleb L.) Yeşil Uç Çeliklerinin Köklenmesi Üzerine Farklı Hormon ve Nispi Nem Uygulamalarının Etkisi AU — Исмаил Хакки Калёнджу, Нильда Эрсой, Метин Айдын 1 год – 2008 г. ПГ — 2008 г. N1 — DO — T2 — Ziraat Fakültesi Dergisi JF — Журнал ДЖО — ДЖОР СП — 32 ЭП — 41 ВЛ — 3 ИС — 1 СН — 1304-9984-2687-3419 М3 — УР — Y2 — 2022 Скорая помощь —
КонецПримечание	%0 Ziraat Fakültesi Dergisi Mahlep (Prunus mahaleb L.) Yeşil Uç Çeliklerinin Köklenmesi Üzerine Farklı Hormon ve Nispi Nem Uygulamalarının Etkisi %A Исмаил Хакки Калёнджу , Нильда Эрсой , Метин Айдын %T Mahlep (Prunus mahaleb L.) Yeşil Uç Çeliklerinin Köklenmesi Üzerine Farklı Hormon ve Nispi Nem Uygulamalarının Etkisi %D 2008 г. %J Ziraat Fakültesi Dergisi %Р 1304-9984-2687-3419 %V 3 %N 1 %R %U
ИСНАД	Калёнджу, Исмаил Хакки , Эрсой, Нильда , Айдын, Метин . Post navigation ← Мошки в горшках комнатных растений: 3 пошаговые инструкции и рецепты домашних средств Что происходит при дыхании растений: Дыхание растений — урок. Окружающий мир, 3 класс. → Растений Дата последнего обновления страницы 2021